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      提升CUT&Tag技能,就不怕卷單細(xì)胞ChIP技術(shù)了

      要問DNA-蛋白質(zhì)互作技術(shù)誰最火?就不得不提CUT&Tag技術(shù)了!CUT&Tag技術(shù)自2019年問世以來,不斷突破創(chuàng)新,從最初只能做組蛋白修飾,到現(xiàn)在越來越多轉(zhuǎn)錄因子見刊,甚至各種R-loop、G4結(jié)構(gòu)的研究也被大量報道。更不要說單細(xì)胞技術(shù)爆火的現(xiàn)在,scCUT&Tag技術(shù)中,各種動物、細(xì)胞以及植物的文章見刊,并且CUT&Tag技術(shù)還衍生出了多靶標(biāo)CUT&Tag,實現(xiàn)一個細(xì)胞,多個靶標(biāo)的研究。

       
      CUT&Tag技術(shù)發(fā)展歷程
       
       
       
      2019年4月  首次發(fā)表
       
      2020年  大量組蛋白修飾、少量轉(zhuǎn)錄因子研究見刊
       

      2021年 大量轉(zhuǎn)錄因子研究見刊

       

      2021年1月  scCUT&tag在動物應(yīng)用方向研究見刊

       
      2021年12月  scCUT&tag在植物應(yīng)用研究見刊
       
      2022年3月  scCUT&tag +scRNA-seq單細(xì)胞多組學(xué)聯(lián)合應(yīng)用見刊
       
      2022年3月  CUT&Tag2for1技術(shù)推出
       

      2022年12月  nano-CUT&Tag推出

       

      更多應(yīng)用持續(xù)更新……

       

      最近經(jīng)常聽到單細(xì)胞ChIP技術(shù),小翌立馬查閱資料去一探究竟,結(jié)果發(fā)現(xiàn)還是換湯不換藥,這個單細(xì)胞ChIP技術(shù)不就是咱們scCUT&Tag么?

      為了幫助大家提升CUT&Tag實驗技能,小翌整理了之前的一些CUT&Tag知識,同時將CUT&Tag實驗的甲醛交聯(lián)方案和CUT&Tag-qPCR方案一起匯總,希望大家進(jìn)一步提升CUT&Tag技能,后續(xù)如果也想嘗試單細(xì)胞ChIP,或者是已經(jīng)在做單細(xì)胞ChIP,咱們也能更得心應(yīng)手。

       

       

      CUT&Tag甲醛交聯(lián)方案

       
      1.對于細(xì)胞樣本,將甲醛溶液加入細(xì)胞培養(yǎng)皿中,使甲醛終濃度為0.1%,室溫條件下,搖床上交聯(lián)2-5 min(若是目的蛋白表達(dá)水平過低可以適當(dāng)延長交聯(lián)時間到10 min) ,交聯(lián)結(jié)束后,立即加入甘氨酸到培養(yǎng)皿中(終濃度0.1 M),搖床繼續(xù)搖15 min以終止交聯(lián),然后進(jìn)行后續(xù)的細(xì)胞捕獲(對于部分弱結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子,可將甲醛調(diào)為0.2%);
       
      2.對于組織樣本,將組織用剪刀剪成小塊后加預(yù)冷的PBS(含1%BSA),加入甲醛溶液使甲醛終濃度為0.1%,室溫?fù)u床上搖2-5 min(若是目的蛋白表達(dá)水平過低可以適當(dāng)延長交聯(lián)時間到10 min) ,交聯(lián)結(jié)束后,立即加入甘氨酸到培養(yǎng)皿中(終濃度0.1 M),搖床繼續(xù)搖15 min以終止交聯(lián),之后,用組織勻漿器勻漿,將組織勻漿后的溶液過細(xì)胞篩以獲取細(xì)胞懸液,然后進(jìn)行后續(xù)的細(xì)胞捕獲(對于部分弱結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子,可將甲醛調(diào)為0.2%)。
       

      【注】

      A:在CUT&Tag實驗開始前,我們需要確定實驗方案。隨著CUT&Tag技術(shù)的發(fā)展,科學(xué)家們發(fā)現(xiàn)有些目標(biāo)蛋白質(zhì)在研究時,輕微甲醛交聯(lián)效果更好。之后,更多的研究表明,使用CUT&Tag技術(shù)研究不同蛋白時,所需的實驗條件也不一樣。做組蛋白修飾、強(qiáng)結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子(如CTCF、RNA polll等)無需甲醛交聯(lián)。而一些弱結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子或轉(zhuǎn)錄輔因子則需要甲醛交聯(lián),并且甲醛交聯(lián)的強(qiáng)度也不一樣。常規(guī)的輕微甲醛交聯(lián)條件為0.1%甲醛室溫交聯(lián)2 min,之后用0.1 M甘氨酸終止交聯(lián)。

       

      B:若在實驗時,有添加甲醛進(jìn)行輕微交聯(lián),那么后續(xù)加終止buffer后,步驟稍微有調(diào)整哦!甲醛交聯(lián)后,蛋白酶K消化步驟調(diào)整為:向每個樣品中加入2 μL 15× Terminate Solution、1 μL DNA Spike-in mix和1 μL 30× Proteinase K(此時磁珠會板結(jié))(若樣品較多,可一起提前配制)。全速渦旋樣品約10 sec,混勻后瞬離,將樣品置于PCR儀,55 ºC消化2 h (熱蓋不低于70 ºC)或者37 ºC過夜。

       

       

      CUT&Tag-qPCR方案

       
      目前做CUT&Tag-qPCR時,有兩種,一種是蛋白酶K消化和gDNA提取后直接qPCR實驗,一種是完成建庫后進(jìn)行qPCR。這兩種方式都有文獻(xiàn)可參考。目前翌圣更推薦完成建庫后進(jìn)行qPCR實驗。
       
       
       

      qPCR 定量檢測

      qPCR試劑以翌圣的Hieff UNICON® Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix(Cat#11184)為例。
       
       
       

      反應(yīng)體系(推薦冰上配制)

       

      使用前務(wù)必充分混勻,避免劇烈震蕩產(chǎn)生過多氣泡。
      a) 引物濃度:通常引物終濃度為0.2 μM,也可以根據(jù)情況在0.1-1.0 μM之間進(jìn)行調(diào)整。
      b) 模板濃度如模板類型為未稀釋cDNA原液,使用體積不應(yīng)超過qPCR反應(yīng)總體積的1/10。
      c) 模板稀釋cDNA原液建議5-10倍稀釋,最佳模板加入量以擴(kuò)增得到的CT值在20-30個循環(huán)為好。
      d) 反應(yīng)體系推薦使用20 μL或50 μL,以保證目的基因擴(kuò)增的有效性和重復(fù)性。
      e) 體系配制請于超凈工作臺內(nèi)配制,并使用無核酸酶殘留的槍頭、反應(yīng)管;推薦使用帶濾芯的槍頭。避免交叉污染。

       

       
       
       

      反應(yīng)程序

      快速程序適用于絕大多數(shù)基因,個別復(fù)雜二級結(jié)構(gòu)基因可嘗試標(biāo)準(zhǔn)程序。

      a) 退火溫度和時間請根據(jù)引物和目的基因的長度進(jìn)行調(diào)整。

      b熒光信號采集請按照儀器使用說明書要求進(jìn)行實驗程序設(shè)置,幾種常見儀器的時間設(shè)定如下:

      20 secApplied Biosystems 7700, 7900HT, 7500 Fast

      31 secApplied Biosystems 7300

      32 secApplied Biosystems 7500

      c) 熔解曲線:通常情況下可以使用儀器默認(rèn)程序。

       

       
       
       

      結(jié)果分析

      定量實驗至少需要三個生物學(xué)重復(fù)。反應(yīng)結(jié)束后需要確認(rèn)擴(kuò)增曲線及熔解曲線。
      1) 擴(kuò)增曲線:標(biāo)準(zhǔn)擴(kuò)增曲線為S型。
      Ct值落在20-30之間時,定量分析最準(zhǔn)確;
      Ct值小于10時,需要將稀釋模板后,重新進(jìn)行實驗;
      Ct值介于30-35之間時,需要提高模板濃度,或者增大反應(yīng)體系的體積,以提高擴(kuò)增效率,保證結(jié)果分析的準(zhǔn)確性;
      Ct值大于35時,檢測結(jié)果無法定量分析基因的表達(dá)量,但可用于定性分析。
       
      2) 熔解曲線:
      熔解曲線單峰,表明反應(yīng)特異性好可以進(jìn)行定量結(jié)果分析;若熔解曲線出現(xiàn)雙峰或者多峰,則不能進(jìn)行定量分析。
      熔解曲線出現(xiàn)雙峰,需要通過DNA瓊脂糖凝膠電泳判斷非目標(biāo)峰是引物二聚體還是非特異性擴(kuò)增。
      如果是引物二聚體,建議降低引物濃度,或者重新設(shè)計擴(kuò)增效率高的引物。
      如果是非特異性擴(kuò)增,請?zhí)岣咄嘶饻囟龋蛘咧匦略O(shè)計更高特異性的引物。

       

      圖:spike in normalization前,同一基因在不同投入量細(xì)胞結(jié)果中,基因的富集倍率差異較大,qEVX1和HOX在100w和10w投入量中,基因不富集,在1w cell投入中,基因富集。

       

      圖:使用試劑盒中的spike in 2進(jìn)行normalization處理,同一基因在不同投入量細(xì)胞結(jié)果中,基因的高集倍率差異不大。

      圖:使用試劑盒中的spikein 3進(jìn)行normalization處理,同一基因在不同投入量細(xì)胞結(jié)果中,基因的富集倍率差異不大。

       

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