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      “同源重組技術(shù)” 一步法快速克隆技術(shù)常見問題集

       

      過去

      提起“分子克隆”或“載體構(gòu)建”這兩個詞,大家可能先想到的是傳統(tǒng)酶切酶連法,即用限制性內(nèi)切酶產(chǎn)生黏性末端,通過堿基互補配對,T4 DNA Ligase連接兩個片段的克隆方法。

       

      近年

      “同源重組技術(shù)”逐漸受到科研人員的歡迎,如翌圣Hieff Clone®一步法快速克隆技術(shù)。相比之下,同源重組技術(shù)操作更加簡單,不受到酶切位點的限制,可一次進行多個片段的拼接,大大的提高了克隆效率。

       

      雖然同源重組技術(shù)操作簡單,但畢竟實驗過程是環(huán)環(huán)相扣的,一旦某個細節(jié)處理不好,都可能導(dǎo)致實驗失敗。為此,小編精心整理了同源重組實驗的常見問題,并給出了可能的原因和解決方案。希望新手們在遇到類似問題時可快速判斷可能的原因,節(jié)省時間,更順利的完成實驗。

       

       
       
      克隆常見問題與解決
       
       

      常見問題分類:

      無克隆、假陽性、菌落PCR無條帶、酶切鑒定多條帶

       

       
      無克隆


      出現(xiàn)無克隆的現(xiàn)象,可能的原因主要是連接不成功或連接成功,但轉(zhuǎn)化失敗。具體原因分別如下:

      1、 連接不成功

      可能原因

      解決方法

      1)引物設(shè)計錯誤。

      1)設(shè)計原則:同源臂(15-25 bp,GC含量40-60%)+酶切位點(根據(jù)實驗需求保留或刪除)+基因特異性引物。

      2)判斷方法:可用翌圣無縫克隆引物設(shè)計軟件核對

      2)載體與目的片段使用比例失調(diào)。

      1)載體和目的片段濃度測定方法:常用吸光度法或瓊脂糖電泳法。

      2)載體與目的片段添加比例:

      ①單片段建議:最適載體與目的片段摩爾比為1:2-1:3,載體使用量為0.03 pmol;目的片段使用量為0.06-0.09 pmol。

      ②多片段建議:最適DNA使用量為每片段(含線性化載體)0.03 pmol。

      3)載體與目的片段不純。

      1)推薦對線性化載體、PCR產(chǎn)物進行膠回收純化。

      2)純化產(chǎn)物建議溶解在pH8.0的ddH2O中保存。

      3)若為未純化的DNA,加入總體積不超過反應(yīng)體系體積1/5。

      4)操作問題或試劑盒失效。

      建議做試劑盒附帶的陽性對照實驗。判斷方法:

      1)若陽性對照有克隆并檢測為陽性,則排除試劑盒問題。

      2)若陽性對照無克隆,可能是操作問題或試劑盒失效,建議換其他人或換試劑盒進行陽性對照實驗,進一步確定問題。

       

      2、 連接成功,但無克隆

      可能原因

      解決方法

      1)感受態(tài)細胞效率低,如< 107 cfu/μg。

      建議用轉(zhuǎn)化效率>107 cfu/μg的感受態(tài)細胞。

      判斷方法:可轉(zhuǎn)化0.1ng質(zhì)粒(如PUC19),觀察克隆數(shù),若生長大于1000個菌斑,則轉(zhuǎn)化效率大于107cfu/μg。

      2)抗生素種類錯誤。

      建議將未線性化載體轉(zhuǎn)化涂板。

      判斷方法:若未長克隆,則可能是抗性種類錯誤或濃度過高。需檢查質(zhì)粒圖譜確認抗性或確認最適濃度。

       

       
      假陽性


      出現(xiàn)假陽性的情況,主要表現(xiàn)有兩種,克隆不含插入片段或含有錯誤的插入片段。具體原因分別如下:

      1、克隆不含插入片段(空載)

      可能原因

      解決方法

      1)載體線性化不完全。

      建議將已制備的線性化的載體轉(zhuǎn)化涂板。  

      判斷方法:如果長克隆較多,則表示線性化不完全。建議優(yōu)化酶切體系。

      2)體系中混入了相同抗性的環(huán)狀質(zhì)粒。

      1)產(chǎn)生原因:

      ①以反向PCR方式進行載體線性化,殘留環(huán)狀質(zhì)粒模板導(dǎo)致。

      ②目的基因PCR模板為與載體相同抗性的環(huán)狀質(zhì)粒,殘留環(huán)狀 質(zhì)粒模板導(dǎo)致。

      2)判斷方法:將已制備的線性化載體和目的片段分別轉(zhuǎn)化涂板,如果長克隆較多,則表示有相同抗性的環(huán)狀質(zhì)?;烊?。建議PCR擴增產(chǎn)物先用DpnI 消化模板后,再進行膠回收純化處理或直接進行膠回收純化處理,去除殘留的環(huán)狀模板質(zhì)粒導(dǎo)致的假陽性。

       

      2、克隆含有錯誤的插入片段

      可能原因

      解決方法

      1)PCR產(chǎn)物混有非特異擴增產(chǎn)物。

      1)可能情況:PCR擴增目的基因時有非特異條帶出現(xiàn),未進行膠回收純化。

      2)解決方案:

      ①優(yōu)化PCR體系,提高特異性;

      ②膠回收PCR產(chǎn)物;

      ③鑒定更多的克隆。

      2)片段缺失。

      1)可能情況:載體或片段有多個同源重復(fù)序列。

      2)解決方案:借助網(wǎng)站或軟件進行序列比對(如NCBI, Vector NTI等)。

       

       
      菌落PCR無條帶


      出現(xiàn)菌落PCR無條帶的現(xiàn)象,可能與PCR擴增或重組連接有關(guān),具體原因分別如下:

      可能原因

      解決方法

      1)菌落PCR引物錯誤。

      建議用載體的通用引物進行菌檢,或至少使用一條通用引物。

      2)PCR體系或程序不合適。

      1)可能情況:用目的片段引物和載體通用引物擴增都無產(chǎn)物。

      2)解決方案:

      ①優(yōu)化PCR體系、程序;

      ②提取質(zhì)粒,以質(zhì)粒做模板PCR驗證;

      ③換酶切法鑒定克隆。

      3)連接失敗。

      1)判斷方法:目的引物或一端載體通用引物,另一端目的引物擴增無條帶,但載體通用引物擴增有條帶,且大小符合空載。2)可能原因:載體線性化不完全。建議優(yōu)化酶切體系。

       




       
      酶切鑒定多條帶

       

      可能原因

      解決方法

      重組載體上有多個相同的酶切位點。

      1)換其他酶切位點進行酶切鑒定。

      2)更換克隆鑒定方法,如換成菌落PCR或測序鑒定。

       

      以上就是翌圣生物為大家整理的同源重組的常見問題及相應(yīng)的建議,希望對大家有所幫助。如果還有其它更多關(guān)于同源重組的問題,歡迎留言或來電。如果您之前在用傳統(tǒng)酶的切酶連技術(shù),現(xiàn)對高效的同源重組技術(shù)躍躍欲試,那趕快行動起來吧!

       

       
       
      產(chǎn)品推薦
       
       

      翌圣生物將提供高體驗滿意度的產(chǎn)品解決方案作為責(zé)任,追求從實驗操作者的視角考量產(chǎn)品性能!在此考量下,為大家推薦以下匠心出品——Hieff CloneTM克隆系列產(chǎn)品。該系列產(chǎn)品克隆效率顯著提升,可達95%以上。基于同源重組的方式,該系列產(chǎn)品無需考慮酶切位點,適用于任何載體和任意片段的連接。同時兼具連接反應(yīng)時間短(20 min)、操作簡單等優(yōu)勢。

      產(chǎn)品定位

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      Hieff CloneTM一步法克隆


      產(chǎn)品優(yōu)勢
      ● 無需考慮酶切
      位點:不受插入片段酶切位點的限制,適用于任何載體;插入片段兼容粘性或平末端。

      ● 設(shè)計簡單:在插入片段的PCR擴增引物5’端引入20 bp左右與載體末端同源的序列即可。

      ● 快速50℃,20 min即可完成重組反應(yīng)??寺£栃月士蛇_95%以上。

      ● 應(yīng)用廣泛:可用于單片段或多片段定向克隆,也可結(jié)合Canace高保真酶,應(yīng)用于定點突變。

       

      客戶反饋數(shù)據(jù)

      高效、快速單片段連接

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      注. A: 陰性對照轉(zhuǎn)化平板; B: 重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化平板; C: 1和2分別為原始載體和線性化載體濃度檢測電泳圖; D: 目的片段的濃度檢測電泳圖; E: 目的片段的菌落PCR鑒定電泳圖; F: 1為重組質(zhì)粒的酶切鑒定電泳圖, 2為原始質(zhì)粒酶切對照圖; M: DL10000。pCAMBIA1300載體: 10217bp, 目的片段: 2352bp。

       

      高效、快速多片段連接

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      注. A: 重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化平板; B: 1為載體酶切后瓊脂糖凝膠電泳圖; C: 菌落PCR驗證結(jié)果, 其中1為原始質(zhì)粒對照電泳, 2-5為重組質(zhì)粒, 僅檢測867bp的一個目的片段, 6為假陽性; D: 陽性克隆測序結(jié)果; M:Marker II。pBR322載體:3996bp,目的片段:576bp+867bp+915bp+647bp。

       

      發(fā)表部分文獻

      [1]. Liu C X, Li X, Nan F, et al. Structure and degradation of circular RNAs regulate PKR activation in innate immunity[J]. Cell, 2019.(IF 36.616)

      [2]. Wang Y, Hu SB, et al. Genome-wide screening of NEAT1 regulators reveals cross-regulation between paraspeckles and mitochondria. Nat Cell Biol.2018 Oct;20(10):1145-1158.(IF 20.06)

      [3]. Jiang, Y., et al., Plants transfer lipids to sustain colonization by mutualistic mycorrhizal and parasitic fungi[J]. Science, 2017.(IF 37.205)

       

      Hieff CloneTM TOPO克隆

       

      產(chǎn)品優(yōu)勢

      平末端和A末端PCR產(chǎn)物均可在瞬間(幾秒鐘-5分鐘)完成連接;

      無需并與和熱休克,室溫5分鐘內(nèi)完成轉(zhuǎn)化;37℃ 10分鐘復(fù)蘇可以涂板;

       

      客戶反饋數(shù)據(jù)

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      發(fā)表部分文獻

      [1]. Jiang, Y., et al., Plants transfer lipids to sustain colonization by mutualistic mycorrhizal and parasitic fungi[J]. Science, 2017.(IF 37.205)

      [2]. Xing, Y.H., et al., SLERT Regulates DDX21 Rings Associated with Pol I Transcription[J]. Cell, 2017. 169(4): p. 664-678.e16.(IF 30.41)

      [3] Li X, Liu C X, Xue W, et al. Coordinated circRNA biogenesis and function with NF90/NF110 in viral infection[J]. Molecular Cell, 2017. (IF 14.7)

       

       

       
       
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