選擇一款轉(zhuǎn)染試劑后,在使用過程中也會遇到各種問題,我們接下來對yeasen品牌產(chǎn)品常見問題進(jìn)行匯總,供大家參考↓↓↓
Hieff Trans™ Liposomal Transfection Reagent 脂質(zhì)體核酸轉(zhuǎn)染試劑
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血清的存在會影響脂質(zhì)體的形成,建議配制核酸轉(zhuǎn)染試劑復(fù)合物時采用無血清培養(yǎng)基(一般推薦MEM 培養(yǎng)基)。
轉(zhuǎn)染試劑能否凍存?
不能。本試劑一定要4 ℃保存,要注意避免反復(fù)多次長時間開蓋,長時間開蓋會導(dǎo)致脂質(zhì)體氧化而影響轉(zhuǎn)染效率。
使用Hieff Trans™脂質(zhì)體核酸轉(zhuǎn)染試劑需要注意什么?
1)細(xì)胞鋪板密度較高,以90%-95%為佳;
2)使用高純度的DNA有助于獲得較高的轉(zhuǎn)染效率;
3)制備轉(zhuǎn)染復(fù)合物時要求用無血清培養(yǎng)基稀釋DNA和轉(zhuǎn)染試劑;
4)轉(zhuǎn)染的時候培養(yǎng)基中不能添加抗生素;
5)試劑應(yīng)該在4度保存,要注意避免多次反復(fù)長時間開蓋;
6)初次使用應(yīng)優(yōu)化DNA濃度和陽離子脂質(zhì)體試劑量以得到最大的轉(zhuǎn)染效率。DNA 和轉(zhuǎn)染試劑的比例,通常推薦是1:2-1:3。
不需要。脂質(zhì)體復(fù)合物可以穩(wěn)定存在6個小時。如果在進(jìn)行轉(zhuǎn)染前沒有進(jìn)行細(xì)胞換液,為了保證細(xì)胞正常生長所需的營養(yǎng),需要在4~6小時后換用新的培養(yǎng)基。但如果轉(zhuǎn)染之前已進(jìn)行過換液則在脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染后不需要進(jìn)行再次換液。
若想提高轉(zhuǎn)染效率,應(yīng)該注意什么?
1)轉(zhuǎn)染時細(xì)胞的密度,90%-95%。
2)轉(zhuǎn)染時,核酸和脂質(zhì)體稀釋液要用MEM無血清培養(yǎng)基。
3)轉(zhuǎn)染后4-6h可選擇換液。
可否進(jìn)行DNA和siRNA的共轉(zhuǎn)染?效果如何?
DNA和siRNA的共轉(zhuǎn)染時候,siRNA轉(zhuǎn)染效率差。
轉(zhuǎn)染試劑可否進(jìn)行慢病毒包裝的轉(zhuǎn)染呢?
慢病毒包裝是可以的,但是在進(jìn)行慢病毒包裝的效率不一定和轉(zhuǎn)染的效率有關(guān),同時還跟包裝質(zhì)粒的選擇和質(zhì)粒間的比例有關(guān)系。
懸浮細(xì)胞轉(zhuǎn)染是否可以用Hieff Trans™脂質(zhì)體核酸轉(zhuǎn)染試劑?
Hieff Trans™脂質(zhì)體核酸轉(zhuǎn)染試劑可以用于懸浮細(xì)胞轉(zhuǎn)染,具體操作可見Protocol。另外,我們還推出了專門用于懸浮細(xì)胞的轉(zhuǎn)染試劑(Cat No. 40805, 懸浮細(xì)胞專用脂質(zhì)體核酸轉(zhuǎn)染試劑)。
Hieff Trans™ siRNA/miRNA體外轉(zhuǎn)染試劑
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DNA轉(zhuǎn)染和siRNA轉(zhuǎn)染有什么不同?
1)siRNA由于只有二十幾個堿基對,相比DNA幾千上萬對堿基,小了許多。
2)用于轉(zhuǎn)染DNA的轉(zhuǎn)染試劑和方法并不適用于轉(zhuǎn)染siRNA。
3)siRNA轉(zhuǎn)染比DNA轉(zhuǎn)染對轉(zhuǎn)染試劑細(xì)胞毒性的要求嚴(yán)格。
轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染后需要換液嗎?
對于換液可以區(qū)分兩種情況:
1)轉(zhuǎn)染之前如果沒有換液應(yīng)在轉(zhuǎn)染6 小時左右后換液,以保證細(xì)胞生長所需營養(yǎng)。
2)如果轉(zhuǎn)染之前如果有換液,可以按照平時等到培養(yǎng)基出現(xiàn)營養(yǎng)不足時換液。
PEI轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)siRNA和質(zhì)粒的效率如何?
不可凍存,因為轉(zhuǎn)染試劑是一種PEI陽離子轉(zhuǎn)染試劑,低溫下凍存,會破壞PEI轉(zhuǎn)染試劑的活性,因此最好是4 度儲存,保持最好的轉(zhuǎn)染效能。
若想提高轉(zhuǎn)染效率,應(yīng)該怎么操作?
1)轉(zhuǎn)染時細(xì)胞的密度,30%-50%。
2)轉(zhuǎn)染時,siRNA和脂質(zhì)體稀釋液要用Opti-MEM 無血清培養(yǎng)基。
3)轉(zhuǎn)染后4-6h 可選擇換液。