產(chǎn)品簡介

Hieff NGS^® Fast Tagment DNA Library Prep Kit for Illumina^® (for 50 ng)是針對 lllumina^®高通量測序平臺專業(yè)開發(fā)設(shè)計的轉(zhuǎn)座酶法建庫試劑盒，適用于50 ng的基因組DNA、cDNA、擴(kuò)增子（>500 bp）等樣本的建庫。與常規(guī)分步法建庫相比，Hieff NGS^® Fast Tagment DNA Library Prep Kit for Illumina^®采用新型轉(zhuǎn)座酶和優(yōu)化的緩沖體系，僅需10 min即可完成DNA片段化、末端修復(fù)和接頭連接過程，顯著縮短建庫時間至1.5小時以內(nèi)，并獲得優(yōu)異的測序質(zhì)量。此外，本試劑盒已經(jīng)不同GC含量DNA樣本的驗證，無偏好性或僅具有極低的偏好性。本試劑盒提供的所有試劑盒組分，都經(jīng)過嚴(yán)格的質(zhì)量與功能驗證，最高程度保障產(chǎn)品優(yōu)異性能與批間穩(wěn)定性。

產(chǎn)品信息

貨號	12207ES08 / 12207ES24 / 12207ES96
規(guī)格	8 T / 24 T / 96 T

組分信息

組分編號		組分名稱	12207ES08	12207ES24	12207ES96
12207-A		5×Reaction Buffer	80 μL	240 μL	960 μL
12207-B		Transposome Mix V50	40 μL	120 μL	480 μL
12207-C		6×Terminate Solution	80 μL	240 μL	960 μL
12207-D		PCR Primer Mix	24 μL	72 μL	288 μL
12207-E		2×Ultima Amplification Mix	200 μL	600 μL	2400 μL
12207-F		T5 (T501)*	8 μL	-	-
12207-G		T7 (T701)*	4 μL	-	-
12207-H		T7 (T702)*	4 μL	-	-

注：*測序時 Index 序列T501-CTCTCTAT（NovaSeq 6000 v1.0）或ATAGAGAG（NovaSeq 6000 v1.5），T701-TAAGGCGA，T702-CGTACTAG。

儲存條件

-25~-15℃保存，有效期1年。

注意事項

一、關(guān)于操作

1. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

2. 請于使用前將試劑盒酶組分置于冰盒解凍，buffer組分置于室溫解凍。解凍后上下顛倒充分混勻，短離后置于冰上待用。

3. 配制各步驟反應(yīng)液時推薦使用移液器吹打混勻或輕輕振蕩，劇烈振蕩可能會造成文庫產(chǎn)出下降。

4. 為避免樣品交叉污染，推薦使用帶濾芯的槍頭，吸取不同樣品時請更換槍頭。

5. 推薦在帶熱蓋的PCR儀中進(jìn)行各步驟反應(yīng)，使用前應(yīng)預(yù)熱PCR儀至反應(yīng)溫度。

6. PCR產(chǎn)物因操作不當(dāng)極容易產(chǎn)生氣溶膠污染，進(jìn)而影響實驗結(jié)果準(zhǔn)確性。推薦將PCR反應(yīng)體系配制區(qū)和PCR產(chǎn)物純化檢測區(qū)進(jìn)行強(qiáng)制性的物理隔離；使用專用的移液器等設(shè)備；并定時對各實驗區(qū)域進(jìn)行清潔（使用0.5%次氯酸鈉或10%漂白劑進(jìn)行擦拭清理），以保證實驗環(huán)境的潔凈度。

7. 本產(chǎn)品僅作科研用途！

二、關(guān)于產(chǎn)品原理

1. 本產(chǎn)品基于轉(zhuǎn)座酶法開發(fā)，其核心原理是轉(zhuǎn)座酶及其轉(zhuǎn)座機(jī)制。在Transposome Mix中包含由轉(zhuǎn)座酶和兩種等摩爾的接頭Adapter 1和Adapter 2構(gòu)成一個完整的轉(zhuǎn)座子。轉(zhuǎn)座發(fā)生時，該轉(zhuǎn)座子將Adapter 1和Adapter 2接頭序列插入靶基因中，形成一端帶有Adapter 1，一端帶有Adapter 2的DNA，之后利用DNA聚合酶將轉(zhuǎn)座形成的切口補(bǔ)齊。這種產(chǎn)物經(jīng)N5（N5XX）和N7（N7XX）以及P5和P7（PCR Primer Mix）兩對引物擴(kuò)增，產(chǎn)物經(jīng)分選和純化后即為可測序文庫。

 

 

 

 

 

 

 

 

 

圖1  Fast Tagment DNA建庫試劑盒原理

 

三、關(guān)于DNA片段化

1. 本試劑盒使用轉(zhuǎn)座酶進(jìn)行DNA片段化。如DNA樣品為PCR產(chǎn)物，應(yīng)保證其長度>500 bp。因轉(zhuǎn)座酶無法作用于DNA末端，因此PCR產(chǎn)物最末端50 bp測序覆蓋度可能會有所降低。我們推薦您在制備PCR產(chǎn)物時將待測區(qū)域兩末端各延長 50-100 bp，以避免末端測序覆蓋度降低的情況。

2. 本試劑盒適用50 ng Input DNA。在Input DNA投入前，應(yīng)將其純化并溶于滅菌蒸餾水中，A260/A280 = 1.8-2.0，并使用基于雙鏈DNA熒光染料的方法，如 Qubit^®、PicoGreen^®等進(jìn)行定量。【注意：因Transposome Mix對DNA濃度非常敏感，所以準(zhǔn)確的DNA濃度測定對實驗成功與否至關(guān)重要。】

四、關(guān)于DNA磁珠純化與分選（Bead-based Clean Up and Size Selection）

1. 磁珠使用前應(yīng)先平衡至室溫，否則會導(dǎo)致得率下降、分選效果不佳。

2. 磁珠每次使用前都應(yīng)充分振蕩混勻或使用移液器上下吹打充分混勻。

3. 轉(zhuǎn)移上清時，請勿吸取磁珠，即使微量殘留都將影響后續(xù)文庫質(zhì)量。

4. 磁珠漂洗使用的80%乙醇應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配，否則將影響回收效率。

5. 磁珠使用過程中，應(yīng)保證移液準(zhǔn)確性。

6. 產(chǎn)物洗脫前應(yīng)將磁珠置于室溫干燥。干燥不充分容易造成無水乙醇?xì)埩粲绊懞罄m(xù)反應(yīng)；過分干燥又會導(dǎo)致磁珠開裂進(jìn)而

降低純化得率。通常情況下，室溫干燥3-5 min足以讓磁珠充分干燥。

7. DNA純化或長度分選產(chǎn)物如需保存，可使用0.1×TE Buffer洗脫，產(chǎn)物于4°C可保存1周，-20°C可保存1個月。

• 關(guān)于文庫擴(kuò)增（Library Amplification）

1. 使用本試劑盒必須進(jìn)行文庫擴(kuò)增步驟。因轉(zhuǎn)座反應(yīng)產(chǎn)物并非完整的雙鏈DNA文庫，必須通過PCR反應(yīng)生成完整的DNA文庫。

2. 當(dāng)Input DNA量為50 ng時，推薦使用5-9個擴(kuò)增循環(huán)，7個循環(huán)的文庫產(chǎn)出約為900 ng。

六、關(guān)于文庫質(zhì)檢（Library Quality Analysis）

1. 通常情況下，構(gòu)建好的文庫可通過長度分布檢測和濃度檢測來進(jìn)行質(zhì)量評價。

2. 文庫濃度檢測可使用：基于雙鏈DNA熒光染料的方法，如Qubit^®、PicoGreen^®等；基于qPCR絕對定量的方法。

3. 推薦使用qPCR方法進(jìn)行文庫濃度檢測：Qubit^®、PicoGreen^®等基于雙鏈 DNA 熒光染料的濃度測定方法時，無法有效區(qū)分單端連接Adapter的產(chǎn)物、兩端均未連接Adapter的產(chǎn)物以及其他不完整雙鏈結(jié)構(gòu)產(chǎn)物；qPCR絕對定量基于PCR擴(kuò)增原理，僅定量樣品中兩端Adapter完整的文庫（即可測序的文庫），可排除單端或雙端都不連接Adapter的不可測序文庫的干擾。

4. 文庫濃度檢測不可使用：基于光譜檢測的方法，如NanoDrop^®等。

5. 文庫長度分布檢測，可通過Agilent Bioanalyzer 2100等基于毛細(xì)管電泳或微控流原理的設(shè)備進(jìn)行檢測。

使用說明  

一、自備材料

1. 純化磁珠：Cat#12601，Hieff NGS^® DNA Selection Beads或Cat#A63880，AMPure XP Beads或其他等效產(chǎn)品。

2. DNA質(zhì)控：Agilent Technologies 2100 Bioanalyzer或其他等效產(chǎn)品。

3. T5（T5XX）和T7（T7XX）Index 引物：Hieff NGS^® Tagment Index Kit for Illumina^® (96 Index)（Cat#12416ES96）。

4. 其他材料：無水乙醇、滅菌超純水、TE Buffer（10 mM Tris-HCl, pH 8.0-8.5; 0.1 mM EDTA）、低吸附EP管、PCR管、

磁力架、PCR儀等。

• 操作流程

 

 

 

 

 

 

 

 

 

圖2.  Fast Tagment DNA建庫試劑盒操作流程

三、操作步驟

3.1 DNA片段化（DNA Fragment）

1. 準(zhǔn)備工作：將 Hieff NGS^® DNA Selection Beads 磁珠由冰箱中取出，室溫平衡至少30 min。配制 80%乙醇。將 5×Reaction Buffer 室溫解凍后，顛倒混勻，置于冰上備用。

2. 于無菌PCR管中配制表1所示反應(yīng)體系。

表1  DNA片段化體系

名稱	體積（μL）
50 ng Input DNA	x
5×Reaction Buffer	10
Transposome Mix V50	5
ddH2O	Up to 50 μL

3. 使用移液器輕輕吹打或振蕩混勻，并短暫離心將反應(yīng)液離心至管底。

4. 將上述PCR管置于PCR儀，設(shè)置表2所示反應(yīng)程序，進(jìn)行DNA片段化反應(yīng)。

表2  DNA片段化反應(yīng)程序

溫度	時間
熱蓋105°C	On
55°C	10 min
4°C	Hold

5. 終止反應(yīng)：立即向反應(yīng)物中加入10 μL 6×Terminate Solution，使用移液器輕輕吹打混勻，短暫離心，55℃反應(yīng)10 min，如表3。

表3  終止反應(yīng)程序

溫度	時間
熱蓋105°C	On
55°C	10 min
4°C	Hold

6. 片段化產(chǎn)物純化

1）將平衡至室溫的Hieff NGS^® DNA Selection Beads磁珠，振蕩或上下顛倒混勻，以1.0×比例回收上述片段化產(chǎn)物。

2）吸取60 μL磁珠加入上述60 μL片段化產(chǎn)物中，使用移液槍輕輕吹打混勻，室溫孵育5 min。

3）將PCR管短暫離心并置于磁力架上分離磁珠和液體，待溶液澄清后（約5 min），小心移除上清。

4）保持PCR管始終處于磁力架中，加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠，室溫孵育30 sec后小心移除上清。

5）重復(fù)步驟4），總計漂洗兩次。

6）保持PCR管始終處于磁力架中，開蓋干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂（約5 min）。

7）將PCR管從磁力架中取出，加入21 μL滅菌超純水洗脫。渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打充分混勻，室溫靜置孵育5 min。

8）將反應(yīng)管短暫離心并置于磁力架中，待溶液澄清（約5 min）后小心吸取20 μL上清至干凈的滅菌PCR管中。

7. 立即進(jìn)行步驟3.2，文庫PCR富集。

3.2文庫擴(kuò)增 (Library Amplification)

1. 提前將表 4 中的試劑解凍混勻，置于冰上備用。

2. 片段化程序結(jié)束后，立即將PCR管置于冰上配制表 3 中PCR反應(yīng)體系。

表4  PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系

名稱	體積 (μL)
片段化產(chǎn)物	20
PCR Primer Mix*	3
N5XX*	1
N7XX*	1
2×Ultima Amplification Mix	25
ddH2O	To 50 μL

 

【注意】：*Hieff NGS^® Tagment Index Kit for Illumina® (96 Index)（Cat#12416ES96）中提供8種N5XX 和 12 種N7XX，可根據(jù)樣品數(shù)量和Index 選擇策略自行選擇。

3. 使用移液器輕輕吹打或振蕩混勻，并短暫離心將反應(yīng)液收集至管底。

4. 將PCR管置于PCR儀中，設(shè)置表5所示反應(yīng)程序，進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

 

表5  PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序

溫度	時間	循環(huán)數(shù)
熱蓋105°C	On
72°C	3 min*	1
95°C	30 sec	1
95°C	10 sec	n cycles**
55°C	30 sec
72°C	30 sec
72°C	5 min	1
4°C	Hold	-

【注意】：*此步不可省略。轉(zhuǎn)座反應(yīng)產(chǎn)物并非完整的雙鏈 DNA，72℃孵育 3 min 用于生成成熟的 PCR 模板。

**循環(huán)數(shù)請根據(jù)測序需要進(jìn)行選擇。起始 DNA 量為 50 ng 時，推薦 5-9 個擴(kuò)增循環(huán)。

3.3文庫純化或分選 （Library Clean UP/Size Selection）

如對文庫長度分布無特殊要求，可直接使用 1.0×磁珠純化擴(kuò)增產(chǎn)物，而不進(jìn)行片段分選。如需進(jìn)行片段分選，則進(jìn)行以下

步驟，推薦使用 Cat#12601 Hieff NGS^®DNA Selection Beads 進(jìn)行產(chǎn)物片段分選，為防止接頭或大片段殘留，可進(jìn)行兩次片段分選，或先使用1.0×磁珠純化擴(kuò)增產(chǎn)物后再進(jìn)行分選。

1. 將平衡至室溫的 Hieff NGS^® DNA Selection Beads磁珠，振蕩或上下顛倒混勻。

2. 根據(jù)DNA片段長度要求，進(jìn)行雙輪分選時，需將初始DNA樣本用滅菌蒸餾水補(bǔ)齊至100 μL，參考表6推薦比例向文庫上清中加入第一輪分選磁珠，渦旋混勻或移液器吹打10次混勻，室溫孵育5 min?！咀⒁猓阂騊CR過程中樣品揮發(fā)會導(dǎo)致產(chǎn)物體積不足50 μL，進(jìn)行下面操作之前必須使用滅菌蒸餾水將體積補(bǔ)齊至100 μL，否則分選長度會與預(yù)期不一致?！?/font>

文庫平均總長度	~300 bp	~400 bp	~500 bp	~800 bp
第一輪磁珠用量	80 μL (0.8×)	70 μL (0.7×)	60 μL (0.6×)	50 μL (0.5×)
第二輪磁珠用量	20 μL (0.2×)	20 μL (0.2×)	20 μL (0.2×)	15 μL (0.15×)

表6  磁珠文庫分選推薦比例

【注意】：“×”數(shù)均根據(jù)PCR產(chǎn)物體積補(bǔ)齊至 100 μL 計算而得，如“0.6×”表示0.6×100 μL = 60 μL。

3. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中，待溶液澄清后（約5 min），小心轉(zhuǎn)移上清到干凈的離心管中。

4. 參考表 6 向上清中加入第二輪分選磁珠。

7. 渦旋混勻或移液器吹打10次混勻，室溫靜置5 min。

8. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中，待溶液澄清后（約5 min），小心移除上清。

9. 保持PCR管始終處于磁力架中，加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠，室溫孵育 30 sec，小心移除上清。

10. 重復(fù)步驟9，總計漂洗兩次。

11. 保持PCR管始終處于磁力架中，開蓋干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂（約5 min）。

12. 將PCR管從磁力架中取出，加入適量21 μL ddH₂O，渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打充分混勻，室溫靜置 5 min。

13. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體。待溶液澄清后（約5 min），小心轉(zhuǎn)移20 μL上清至干凈的管中，于-20℃保存。此外，如需獲得長度分布更集中的文庫擴(kuò)增產(chǎn)物，可使用膠回收方式進(jìn)行長度分選和純化；如對文庫長度分布范圍等無特殊要求，擴(kuò)增產(chǎn)物也可不進(jìn)行長度分選，直接使用磁珠或柱純化試劑盒進(jìn)行純化。

3.4 文庫質(zhì)量控制

通常情況下，構(gòu)建好的文庫可通過濃度檢測和長度分布檢測來進(jìn)行質(zhì)量評價，具體請參見注意事項六。

3.5 參考實例

使用Hieff NGS^® Fast Tagment DNA Library Prep Kit for Illumina^®對50 ng嗜鹽桿菌gDNA樣本建庫，并分別使用1.0×磁珠進(jìn)行純化，0.8×/0.2×、0.7×/0.2×、0.5×/0.15×磁珠比例進(jìn)行長度分選，結(jié)果使用Agilent 2100 Bioanalyzer進(jìn)行檢測。

圖3  Agilent 2100 Bioanalyzer文庫質(zhì)量分析

 

HB210809