Hieff NGS® Universal Library Convert Kit可以將Illumina試劑盒構(gòu)建的雙鏈線性文庫轉(zhuǎn)化為兼容華大智造測序平臺的環(huán)狀ssDNA文庫。構(gòu)建的文庫可使用BGISEQ-500RS、 MGISEQ-200RS 和 MGISEQ-2000RS 進行測序。
組分編號 |
組分名稱 |
13342ES16 |
13342ES96 |
13342-A |
AC-PCR Amplification mix |
400 μL |
2×1200 μL |
13342-B |
AC-PCR Primer mix |
16 μL |
96 μL |
13342-C |
App-A Splint Buffer |
240 μL |
2×720 μL |
13342-D |
Ligase |
80 μL |
480 μL |
13342-E |
Digestion Buffer |
130 μL |
780 μL |
13342-F |
Digestion Enzyme |
32 μL |
192 μL |
-25~-15℃保存,有效期1年。
1. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
2. 請于使用前將試劑盒各組分置于室溫解凍。解凍后上下顛倒數(shù)次充分混勻,短暫離心后置于冰上待用。
3. 配制各步驟反應液時推薦使用移液器吹打混勻或輕輕振蕩,劇烈振蕩可能會造成文庫產(chǎn)出下降。
4. 為避免樣品交叉污染,推薦使用帶濾芯的槍頭,吸取不同樣品時請更換槍頭。
5. 推薦在帶熱蓋的PCR儀中進行各步驟反應,使用前應預熱PCR儀至反應溫度附近。
6. 定時對各實驗區(qū)域進行清潔(使用0.5%次氯酸鈉或10%漂白劑進行擦拭清理),以保證實驗環(huán)境的潔凈度。
7. 本產(chǎn)品僅作科研用途!
2.1樣本要求
單index:
5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACAC-TCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-Insert-AGATCGGAAGAGCACACGTCTGAACTCCAGTCAC-[i7]-ATCTCGTATGCCGTCTTCTGCTTG-3'
雙index:
5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACAC[i5]ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-insert-AGATCGGAAGAGCACACGTCTGAACTCCAGTCAC-[i7]-ATCTCGTATGCCGTCTTCTGCTTG-3'
2.2 樣本量要求
根據(jù)文庫總量選擇合適的線性dsDNA投入量,詳見表1:
表1 線性dsDNA總量與濃度要求
線性dsDNA文庫投入量(ng) |
線性dsDNA文庫總量(ng) |
線性dsDNA文庫濃度要求(ng/μl) |
10 |
≤25 |
>0.45 |
25 |
25<文庫總量<50 |
1<文庫濃度<2.1 |
50 |
>50 |
>2.1 |
2.3 轉(zhuǎn)換PCR
不同線性 dsDNA 文庫投入量,所需 PCR 循環(huán)也不相同,詳見表2:
表2 不同線性dsDNA投入量PCR循環(huán)數(shù)推薦表
線性dsDNA文庫投入量(ng) |
推薦PCR循環(huán)數(shù) |
10 |
8 |
25 |
7 |
50 |
6 |
2.4 轉(zhuǎn)換文庫pooling要求
1. 不推薦在轉(zhuǎn)換PCR前對線性dsDNA進行pooling。
2. 需將接頭轉(zhuǎn)換 PCR 產(chǎn)物混合測序,則 Sample Barcode Pooling 應遵循堿基平衡的原則:最佳平衡狀態(tài) ATGC 4種堿基的占比應分別為 25% ,若不能達到 25%,則要保證每個 cycle 都存在 ATGC 四種堿基序列,并且最少的堿基不應低于 12.5%,最多的堿基不應高于 62.5%。
3. 不同片段長度的文庫不建議 pooling 環(huán)化。
4. 若樣本所需數(shù)據(jù)量相同且長度相同,則可以等量混合,每個樣本所需的質(zhì)量按照公式1進行計算:
公式1混合樣本中單個樣本所需質(zhì)量的計算
單個樣本所需的質(zhì)量 (ng)=1 pmol Input DNA 對應的質(zhì)量 (ng)/混合的樣本個數(shù) N
5. 混合后接頭轉(zhuǎn)換 PCR 產(chǎn)物總量為 1 pmol,總體積最多為 40 μL;若文庫不足則用 TE buffer補充至 40 μL。
三、關于磁珠純化(Bead-based Clean Up)
1. 磁珠使用前應先平衡至室溫,否則會導致純化得率下降。
2. 磁珠每次使用前都應充分振蕩混勻或使用移液器上下吹打充分混勻。
3. 磁珠漂洗使用的80%乙醇應現(xiàn)用現(xiàn)配,否則將影響回收效率。
4. 產(chǎn)物洗脫前應將磁珠置于室溫干燥。干燥不充分容易造成無水乙醇殘留影響后續(xù)反應;過分干燥又會導致磁珠開裂進而降低純化得率。通常情況下,室溫干燥約5 min。
5. 單鏈環(huán)產(chǎn)物純化保存,可使用TE Buffer洗脫,產(chǎn)物可于-20°C可保存1個月。
四、關于文庫質(zhì)檢(Library Quality Analysis)
1. 轉(zhuǎn)換文庫推薦使用 Qubit® dsDNA HS Assay Kit 或 Quant-iTTM PicoGreen® dsDNA Assay Kit 等雙鏈DNA進行定量, 要求最終接頭轉(zhuǎn)換PCR產(chǎn)物的摩爾產(chǎn)量至少為1 pmol,可根據(jù)公式2計算或參考表3。
公式2 PCR 產(chǎn)物摩爾數(shù)與質(zhì)量間的換算
1 pmol PCR 產(chǎn)物對應的質(zhì)量 (ng)=DNA 主片段大小 (bp)×0.66
表3 不同片段大小PCR產(chǎn)物1 pmol對應產(chǎn)量
PCR產(chǎn)物主片段大?。╞p) |
1 pmol對應產(chǎn)量(ng) |
300 |
198 |
350 |
231 |
400 |
264 |
450 |
297 |
500 |
330 |
2. 單鏈環(huán)產(chǎn)物純化后推薦使用 Qubit® ssDNA Assay Kit 單鏈 DNA 熒光染料試劑對純化后產(chǎn)物進行定量。
3. 單鏈環(huán)狀 DNA 產(chǎn)物純化后產(chǎn)量應達到 60 fmol 以上方足夠一次上機測序的量,可根據(jù)公式3計算或參考表4 。
公式 3 單鏈環(huán)摩爾數(shù)與質(zhì)量間的換算
60 fmol 單鏈環(huán)對應的質(zhì)量 (ng)=0.06×DNA 主片段大小 (bp)×0.33
表4 不同PCR產(chǎn)物片段大小對應60 fmol單鏈環(huán)產(chǎn)量
PCR產(chǎn)物主片段大小(bp) |
60 fmol對應產(chǎn)量(ng) |
300 |
5.94 |
350 |
6.93 |
400 |
7.92 |
450 |
8.91 |
500 |
9.90 |
1. 純化磁珠:Cat#12601,Hieff NGS® DNA Selection Beads或Cat#A63880,AMPure XP Beads或其他等效產(chǎn)品。
2. 文庫質(zhì)控:Cat#12640,dsDNA HS Assay Kit for Qubit®或Cat#12642,1×dsDNA HS Assay kit for Qubit®或其他等效產(chǎn)品。
3. 單鏈環(huán)質(zhì)控:Cat#12645,ssDNA Assay Kit或Cat # Q10212, Thermo fisher Qubit® ssDNA Assay Kit。
4. 其他材料:無水乙醇、滅菌超純水、TE Buffer(10 mM Tris-HCl,pH 8.0-8.5+0.1 mM EDTA)、低吸附EP管、PCR管、磁力架、PCR儀等。
二、操作流程
圖1 通用文庫轉(zhuǎn)換流程
Part A接頭轉(zhuǎn)換PCR
該步驟對線性dsDNA文庫進行轉(zhuǎn)換-轉(zhuǎn)化為可以進行后續(xù)環(huán)化的線性dsDNA文庫。
表5 轉(zhuǎn)換PCR擴增反應體系
名稱 |
體積(μL) |
AC-PCR Amplification Mix |
25 |
AC-PCR Primer Mix |
1 |
線性dsDNA 文庫 |
|
ddH2O |
|
Total |
50 |
3. 使用移液器輕輕吹打或振蕩混勻,并短暫離心將反應液收集至管底。
4. 將PCR管置于PCR儀中,設置表6所示反應程序,進行PCR擴增。
表6 PCR擴增反應程序
溫度 |
時間 |
循環(huán)數(shù) |
98°C |
1 min |
1 |
98°C |
|
參照注意事項中表2 |
60°C |
30 sec |
|
72°C |
30 sec |
|
72°C |
5 min |
1 |
4°C |
Hold |
- |
2、轉(zhuǎn)換PCR產(chǎn)物純化
1)準備工作:將Hieff NGS® DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,室溫平衡至少30 min。配制80%乙醇。
2)渦旋振蕩或充分顛倒磁珠以保證充分混勻
3)吸取45 μL Hieff NGS® DNA Selection Beads(0.9×,Beads : DNA=0.9:1)至Adapter Ligation產(chǎn)物中,室溫孵育5 min。
4)將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體,待溶液澄清后(約5 min),小心移除上清。
5)保持PCR管始終置于磁力架中,加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,室溫孵育30 sec后,小心移除上清。
6)重復步驟5,總計漂洗兩次。
7)保持PCR管始終置于磁力架中,開蓋空氣干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂(不超過5 min)。
8)將PCR管從磁力架中取出,進行洗脫:加入32 μL TE buffer,渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打至充分混勻,室溫靜置5 min。
9)將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體。待溶液澄清后(約5 min),小心轉(zhuǎn)移30 μL上清至干凈的管中。
3、轉(zhuǎn)換PCR產(chǎn)物質(zhì)檢
使用Qubit® dsDNA HS Assay Kit等轉(zhuǎn)換PCR產(chǎn)物進行定量,具體請參見注意事項四。
Part B 轉(zhuǎn)換文庫環(huán)化
1 變性
1) 根據(jù)文庫長度,取1 pmol 至0.2 ml PCR管中,用TE Buffer補充至總體積40 μL。
2) 混勻后,在PCR儀上進行 98℃變性3 min,之后立即置于冰上,冰浴2 min后瞬時離心。
2 單鏈環(huán)化
1)將表7中各試劑解凍后,顛倒混勻,置于冰上備用。
2)于冰上配制表7反應體系。
表7 單鏈環(huán)化體系
名稱 |
體積(μL) |
上一步反應物 |
40 |
App-A Splint Buffer |
15 |
Ligase |
5 |
Total |
60 |
3)使用移液器輕輕吹打或低速振蕩混勻,并短暫離心將反應液離心至管底。
4.)將PCR管置于PCR儀上,按照表8所示攝制反應程序,進行單鏈環(huán)化反應。
表8 單鏈環(huán)化反應程序
溫度 |
時間 |
熱蓋42°C |
on |
37°C |
15 min |
4°C |
Hold |
3 酶切消化
1)將表9中各試劑解凍后,顛倒混勻,置于冰上備用。
2)于冰上配制表9所示反應體系。
表9 酶切消化體系
名稱 |
體積(μL) |
上一步反應物 |
60 |
Digestion Buffer |
8 |
Digestion Enzyme |
2 |
Total |
70 |
3)使用移液器輕輕吹打或低速振蕩混勻,并短暫離心將反應液離心至管底。
4)將PCR管置于PCR儀上,按照表10的條件進行反應:
表10 酶切消化反應程序
溫度 |
時間 |
熱蓋42°C |
on |
37°C |
10 min |
4°C |
Hold |
5)反應結(jié)束后,瞬時離心,立即進行純化。
4 消化產(chǎn)物純化
該步驟使用磁珠對酶切消化產(chǎn)物進行純化。
1)準備工作:將Hieff NGS® DNA Selection Beads或 Beckman AMPure XP Beads由冰箱中取出,室溫平衡至少30 min。配制80%乙醇。
2)渦旋振蕩或充分顛倒磁珠以保證充分混勻。
3)吸取120 μL Hieff NGS® DNA Selection Beads至消化產(chǎn)物中,室溫孵育10min。
4)將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體,待溶液澄清后(約2 min),小心移除上清。
5)保持PCR管始終置于磁力架中,加入200μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,室溫孵育30 sec后,小心移除上清。
6)重復步驟5,總計漂洗兩次。
7)保持PCR管始終置于磁力架中,開蓋空氣干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂。
8)將PCR管從磁力架中取出,加入22 μL TE Buffer,渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打至充分混勻,室溫靜置10 min。
9)短暫離心,將 PCR 管始終置于磁力架中靜置,待溶液澄清后(約 2min),將上清小心移至新 PCR 管中, -20℃保存,待制備 DNB。
5 消化產(chǎn)物質(zhì)控
Ver.CN20250218