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      首頁 / 單細(xì)胞測(cè)序 / 產(chǎn)品應(yīng)用詳情

      Smart-seq2:?jiǎn)蝹€(gè)細(xì)胞以及微量細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組建庫成功的保障

       

      單細(xì)胞技術(shù)哪家強(qiáng),翌圣生物來幫忙。

       

      單細(xì)胞技術(shù)介紹

      單細(xì)胞測(cè)序技術(shù),簡(jiǎn)單來說,就是在單個(gè)細(xì)胞水平上,對(duì)基因組、轉(zhuǎn)錄組及表觀基因組水平進(jìn)行測(cè)序分析的技術(shù)。傳統(tǒng)的測(cè)序,是在多細(xì)胞基礎(chǔ)上進(jìn)行的,實(shí)際上得到的是一堆細(xì)胞中信號(hào)的均值,丟失了細(xì)胞異質(zhì)性(細(xì)胞之間的差異)的信息。而單細(xì)胞測(cè)序技術(shù)能夠檢出混雜樣品測(cè)序所無法得到的異質(zhì)性信息,從而很好的解決了這一問題。

       

      單細(xì)胞技術(shù)類型

      單細(xì)胞技術(shù)類型很多,有單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組、單細(xì)胞基因組、單細(xì)胞表觀組(單細(xì)胞ATAC、單細(xì)胞CUT&Tag、單細(xì)胞甲基化、單細(xì)胞Hi-C等)、單細(xì)胞蛋白組、單細(xì)胞代謝組等,各種技術(shù)不斷迭代,檢測(cè)靈敏度也不斷提升。

       

      在眾多細(xì)胞技術(shù)中,應(yīng)用最廣泛的當(dāng)屬單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組了。


      單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組也分為低通量的smart-seq1/2/3和高通量的微流控和微孔板等研究。

       

      今天我們要介紹的主角是Smart-seq2

       

      單細(xì)胞技術(shù)類型

      • Smart-seq技術(shù)于2012年由Ramsköld團(tuán)隊(duì)發(fā)表;

      • Smart-Seq2技術(shù)于2013年及2014年由Picelli團(tuán)隊(duì)改進(jìn)并發(fā)表;

      • Smart-seq3技術(shù)則于2020年由瑞典卡羅林斯卡學(xué)院的Rickard團(tuán)隊(duì)進(jìn)一步改進(jìn)并發(fā)表。


      雖然Smart-seq技術(shù)也迭代了多個(gè)版本,但是迄今為止,Smart-Seq2是使用最多且被廣泛認(rèn)為更穩(wěn)定的技術(shù)類型,也是國內(nèi)市場(chǎng)眾多科技服務(wù)公司推崇的技術(shù)之一。

       

      3.1

      Smart-seq2技術(shù)原理

       

      Smart-seq2關(guān)鍵技術(shù)原理有:

       
      01
       

      MMLVRT

      使用的MMLV具有鏈置換活性和末端轉(zhuǎn)移酶活性。其在逆轉(zhuǎn)錄到達(dá)mRNA 5’端末端時(shí),會(huì)在新合成的cDNA的3’末端多出幾個(gè)C堿基;

      02
       

      TSO引物序列

      TSO引物的5’端含有1個(gè)通用引物序列,而在其3’端,有兩個(gè)核糖鳥苷(rG)和一個(gè)鎖核苷酸(LNA)修飾的鳥苷(G),可以促進(jìn)模板轉(zhuǎn)換,進(jìn)而擴(kuò)增出完整的cDNA序列;

      03
       
      甜菜堿、海藻糖的添加

      某些物種RNA中有發(fā)夾結(jié)構(gòu)、環(huán)形結(jié)構(gòu)等二級(jí)結(jié)構(gòu)容易形成空間位阻影響逆轉(zhuǎn)錄酶結(jié)合,添加甜菜堿和海藻糖能在一定程度上增加酶的熱穩(wěn)定性,同時(shí)破壞RNA的空間位阻。同時(shí),甜菜堿和Mg2+同時(shí)存在,能在一定程度上提高cDNA產(chǎn)量。

       

      3.2

      Smart-seq2技術(shù)流程

       

       

      3.3

      Smart-seq2單細(xì)胞分離方法

       

      單細(xì)胞分離方法很多,有梯度稀釋法、口吸管移液法、自動(dòng)顯微操作法、顯微切割法、流式分選法等,不同的方法對(duì)比如下:

       

      方法

      描述

      優(yōu)點(diǎn)

      缺點(diǎn)

      梯度稀釋法

      梯度稀釋細(xì)胞懸液至每孔一個(gè)細(xì)胞

      方法簡(jiǎn)單,無需專業(yè)設(shè)備

      耗時(shí),分離得到的細(xì)胞可能是多個(gè)細(xì)胞

      口吸管移液法

      使用玻璃毛細(xì)管分離單細(xì)胞

      方法簡(jiǎn)單

      操作困難,具有隨機(jī)行

      自動(dòng)顯微操作法

      使用自動(dòng)微量移液管分離單細(xì)胞

      可在指定位置放置細(xì)胞

      需要專業(yè)設(shè)備

      激光顯微切割

      使用激光從組織切片中分離單細(xì)胞

      保留了空間關(guān)系

      技術(shù)上有難度,有潛在UV損傷

      FACS

      使用電荷分離含有單細(xì)胞的微滴

      根據(jù)細(xì)胞大小、形態(tài)、內(nèi)部復(fù)雜性和蛋白表達(dá)(通過抗體標(biāo)記)準(zhǔn)確篩選細(xì)胞類型

      需要昂貴的專業(yè)設(shè)備,細(xì)胞處于高壓條件下

       

      3.4

      Smart-seq2技術(shù)與其他單細(xì)胞技術(shù)對(duì)比

       

      單細(xì)胞技術(shù)除了Smart-seq、Smart-seq2和Smart-seq3之外,還有CEL-seq2/C1、Drop-seq、MARS-seq、SCRBseq。文章Ziegenhain C, Vieth B, Parekh S, et al. Comparative Analysis of Single-Cell RNA Sequencing Methods. Mol Cell. 2017;65(4):631-643.e4. doi:10.1016/j.molcel.2017.01.023從不同角度來對(duì)單細(xì)胞技術(shù)進(jìn)行評(píng)估,綜合來看,Smart-seq2更勝一籌。

       

       

      測(cè)序質(zhì)量對(duì)比

       
       

      圖.不同單細(xì)胞技術(shù)的測(cè)序質(zhì)量對(duì)比

       

      六種測(cè)序方法都有比較好的測(cè)序質(zhì)量,均超過 50% 的數(shù)據(jù)成功被 mapping到。另外,可以明顯發(fā)現(xiàn)基于全長測(cè)序方案的 Smart-seq 較 UMI,外顯子區(qū)域的 reads 更多,其中 smart-seq2 有 48% 的 reads 比對(duì)到外顯子區(qū)域(如下圖)。這表明 Smart-seq2(48% reads 比對(duì)到外顯子)和 Smart-seq(30% reads 比對(duì)到外顯子)較 UMI 方案(均低于 15% reads 比對(duì)到外顯子)有更好的測(cè)序質(zhì)量。

       

       

      基因檢測(cè)效率對(duì)比

       
       

      圖.不同單細(xì)胞技術(shù)測(cè)序深度和基因檢出數(shù)對(duì)比

      采用抽樣的飽和度分析對(duì)測(cè)序深度進(jìn)行評(píng)估,當(dāng)測(cè)序深度達(dá)到 100 萬reads時(shí),這六種測(cè)序方法均可達(dá)到飽和,但明顯 Smart-seq2 具有更好的基因檢測(cè)效率。

       

       

      單個(gè)細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時(shí)的敏感度對(duì)比

       
       

      圖.不同單細(xì)胞技術(shù)基因檢出情況對(duì)比

       

      在相同的單個(gè)細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞建庫,相同的測(cè)序深度下,檢測(cè)單細(xì)胞中基因表達(dá)數(shù)量。結(jié)果發(fā)現(xiàn),Smart-seq2 敏感度最好,達(dá)到中位數(shù) 9138/cell,而最低的是 Drop-seq 和 MARS-seq,分別約為 4811/cell 和 4763/cell。

       

       

      多個(gè)細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時(shí)的敏感度對(duì)比

       
       

      圖.不同數(shù)量的細(xì)胞進(jìn)行微量細(xì)胞建庫時(shí)基因檢出情況對(duì)比

       

      多個(gè)細(xì)胞建庫后的reads合在一起進(jìn)行生信分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),Smart-seq2 仍然具有更多的基因被檢測(cè)到,MARS-seq 仍然具有最少的基因被檢測(cè)到,這與單細(xì)胞敏感度檢測(cè)是一致的。

       

       

      單細(xì)胞建庫結(jié)果重復(fù)性對(duì)比

       
       

      圖.不同單細(xì)胞技術(shù)建庫后的相關(guān)性分析

       

      利用 92 個(gè)已知的外源 ERCC 轉(zhuǎn)錄本,進(jìn)一步采用線性模型擬合了觀測(cè)的表達(dá)值與已知濃度的相關(guān)系數(shù)(R2)。通過分析發(fā)現(xiàn),這六種方法的相關(guān)系數(shù)都較高,都高于 0.80 的相關(guān)系數(shù)。這表明這六種方法的準(zhǔn)確度都較好,但 Smart-seq2 的相關(guān)系數(shù)為 0.91,而 MARS-seq 相關(guān)系數(shù)為 0.83。

       

       

      不同單細(xì)胞技術(shù)的Drop out對(duì)比

       
       

      圖.不同單細(xì)胞技術(shù)Drop out結(jié)果對(duì)比

       

      對(duì)至少 65 個(gè)單細(xì)胞分析中發(fā)現(xiàn),13361 個(gè)基因在 25% 的細(xì)胞中至少被一種方法檢測(cè)到表達(dá),那么挑選這些基因進(jìn)行分析,MARS-seq 具有最高的 drop out 中位概率(74%),而 Smart-seq2 最低(26%),此時(shí)說明 Smart-seq2 具有更好的敏感度,這與之前的敏感度也是對(duì)應(yīng)的。

       

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      產(chǎn)品推薦

      產(chǎn)品名稱

      貨號(hào)

      規(guī)格

      Hieff NGS® Single Cell/Low Input cDNA Synthesis & Amplification Module
      單細(xì)胞/低投入量cDNA合成及擴(kuò)增模塊

      12500ES24/96

      24 T/ 96 T

      Hieff NGS® Single Cell/Low Input RNA Library Prep Kit
      全長單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組建庫試劑盒

      12502ES24/96

      24 T/ 96 T

      Hieff NGS® Fast Tagment DNA Library Prep Kit for Illumina® (for 1 ng)
      1 ng轉(zhuǎn)座酶建庫試劑盒

      13468ES24/96

      24 T/ 96 T

      Hieff NGS® Tagment Index Kit for Illumina®
      轉(zhuǎn)座酶專用建庫接頭

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      96 ×2T/
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