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      翌圣生物支原體qPCR檢測(cè)試劑盒『快速 - 精準(zhǔn) - 合規(guī)』

      相較于傳統(tǒng)化學(xué)藥物,以基因治療、細(xì)胞治療或組織工程為基礎(chǔ)的新型生物治療業(yè)已成為前沿性治療藥物。這些藥物大多以細(xì)胞為載體制備或構(gòu)建,因此,在此過(guò)程中,對(duì)于細(xì)胞種子庫(kù)、病毒培養(yǎng)和收獲、臨床治療用途的細(xì)胞等生物制品中生產(chǎn)制備過(guò)程易受到支原體污染。

      據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道:支原體污染在儲(chǔ)存細(xì)胞系中發(fā)生率約為 15-35%,在生物制藥行業(yè)中約為0.44-6.70%。在這些污染事件中,95%的支原體種類是以下幾種:口腔支原體、精氨酸支原體、豬鼻支原體、發(fā)酵支原體、人型支原體或萊氏無(wú)膽原體等[1]。

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      圖:生物制品生產(chǎn)過(guò)程中支原體檢測(cè)取樣點(diǎn)

      支原體污染對(duì)于生物制備企業(yè)來(lái)講就如同夢(mèng)魘一般,不僅導(dǎo)致產(chǎn)品品質(zhì)下降;還會(huì)降低表達(dá)水平,最終導(dǎo)致產(chǎn)量降低,同時(shí)也會(huì)對(duì)患者產(chǎn)生不良的副作用,快速、精確的檢測(cè)支原體的存在已然迫在眉睫。目前國(guó)內(nèi)外藥典推薦的支原體檢測(cè)方法主要是基于培養(yǎng)法、NAT(核酸擴(kuò)增法)法、細(xì)胞培養(yǎng)指示法[2]。

      表:藥典檢測(cè)法優(yōu)缺點(diǎn)對(duì)比[2,3]

      方法類型

      優(yōu)點(diǎn)

      缺點(diǎn)

      培養(yǎng)法

      高靈敏度,可檢測(cè)到0.1CFU/mL

      時(shí)間過(guò)長(zhǎng),整個(gè)過(guò)程需28天

      不同支原體需不同培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),某些支原體難以培養(yǎng)

      NAT法(核酸擴(kuò)增)

      快速

      達(dá)到10CFU/mL以下的檢測(cè)限

      需要特定提取試劑盒和檢測(cè)設(shè)備

      DNA的提取質(zhì)量和效率影響結(jié)果的可信任度

      需要其他方法如培養(yǎng)法進(jìn)行可比驗(yàn)證

      指示細(xì)胞培養(yǎng)法

      成本低

      操作較為簡(jiǎn)單

      培養(yǎng)時(shí)間達(dá)一周左右

      靈敏度低于培養(yǎng)法

      存在假陽(yáng)性和假陰性現(xiàn)象

      翌圣生物經(jīng)過(guò)匠心研發(fā),基于EP藥典推薦NAT法推出超簡(jiǎn)便快捷的qPCR支原體檢測(cè)試劑盒,克服了普通PCR靈敏度低和培養(yǎng)法耗時(shí)久的問(wèn)題,將結(jié)果精準(zhǔn)度和使用便捷度有了質(zhì)的提升!

      翌圣生物支原體qPCR檢測(cè)試劑盒可用于確定如細(xì)胞種子庫(kù)、病毒培養(yǎng)和收獲、臨床治療用途的細(xì)胞和生物制品中支原體污染過(guò)程和放行精確檢測(cè)使用,3h內(nèi)可快速、簡(jiǎn)便檢測(cè)支原體存無(wú),優(yōu)于培養(yǎng)法的28天耗時(shí)檢測(cè)過(guò)程。

      產(chǎn)品特點(diǎn)

       
       

         高靈敏度:支原體標(biāo)準(zhǔn)品驗(yàn)證靈敏度達(dá)10CFU/mL

         操作簡(jiǎn)便:樣本制備和檢測(cè)總時(shí)長(zhǎng)<3h

         特異性好:多個(gè)親緣關(guān)系相近物種驗(yàn)證無(wú)交叉反應(yīng)

         符合法規(guī):檢測(cè)方法和過(guò)程按照藥典要求驗(yàn)證,符合法規(guī)要求

         適用性廣:檢測(cè)105種支原體,適用多種樣品(細(xì)胞、病毒、培養(yǎng)基、細(xì)胞制品等)

         準(zhǔn)確性高:探針?lè)z測(cè),避免染料法造成的假陽(yáng)性問(wèn)題,批次間穩(wěn)定

         安全性高:試劑盒內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)品無(wú)感染性,安全性好

      產(chǎn)品數(shù)據(jù)

       
       

      靈敏度和擴(kuò)增效率測(cè)試

       

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      10 CFU/mL 口腔支原體標(biāo)準(zhǔn)品檢出結(jié)果

       
       

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      10 CFU/mL 肺炎支原體標(biāo)準(zhǔn)品檢出結(jié)果

       

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      10 CFU/mL 豬鼻支原體標(biāo)準(zhǔn)品檢出結(jié)果

       
       

      05.jpg

      10 CFU/mL 精氨酸支原體標(biāo)準(zhǔn)品檢出結(jié)果

       
       

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      試劑盒擴(kuò)增效率:lg-8lg copies/ul

       
       

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      擴(kuò)增效率≥96%,標(biāo)準(zhǔn)曲線R2≥0.996

       

      產(chǎn)品對(duì)比

       
       

       

       

      11.jpg

      (S*品牌)

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      (YEASEN品牌)

      10 CFU/mL 口腔支原體標(biāo)準(zhǔn)品檢出結(jié)果

       
       

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      FAQ

       
       

      Q:如何檢測(cè)培養(yǎng)的細(xì)胞是受到支原體污染?

      A:培養(yǎng)細(xì)胞3天及以上取樣品,提取DNA后,取20 μL 待測(cè)樣本按說(shuō)明書給定的操作程序進(jìn)行,待qpcr反應(yīng)結(jié)束后通過(guò)FAM和VIC通道信號(hào)的Ct值來(lái)判斷樣品是否受到支原體污染,如果FAM通道信號(hào)Ct<40 ,且有明顯的擴(kuò)增曲線,VIC通道信號(hào)Ct<40 ,且有明顯的擴(kuò)增曲線,說(shuō)明樣品有支原體污染。

       

      訂購(gòu)信息

       
       

       

      產(chǎn)品名稱

      產(chǎn)品編號(hào)

      規(guī)格

      MycAway™ Mycoplasma Real-time qPCR Detection Kit

      支原體qPCR檢測(cè)試劑盒(探針?lè)ǎ?/span>

      40618ES25

      25 T

      40618ES60

      100 T

       

      相關(guān)產(chǎn)品

       
       

       

      類別

      產(chǎn)品

      貨號(hào)

      規(guī)格

       

      支原體檢測(cè)

      GMyc-PCR Mycoplasma Test Kit GMyc-PCR支原體檢測(cè)試劑盒

      40601ES10/20

      10/20 assays

      MycAwayTM Plus-Color One-Step Mycoplasma Detection Kit 一步法快速支原體檢測(cè)試劑盒

      40612ES25/60

      25/100 T

      支原體去除

      MycAway™ Treatment (1000×)-Mycoplasma Elimination Reagent  MycAwayTM 支原體去除試劑(1000×)

      40607ES03/08

      1/5×1 mL

      支原體預(yù)防

      MycAway™ Prophylactic (2000×)-Mycoplasma Prevention MycAwayTM 支原體預(yù)防試劑(2000×)

      40608ES03/08

      1/5×1 mL


      【文獻(xiàn)引用】

      [1] Fratz-Berilla EJ, Angart P, Graham RJ, et al. Impacts on product quality attributes of monoclonal antibodies produced in CHO cell bioreactor cultures during intentional mycoplasma contamination events. Biotechnol Bioeng. 2020;117(9):2802-2815.

      [2] Volokhov DV, Graham LJ, Brorson KA, Chizhikov VE. Mycoplasma testing of cell substrates and biologics: Review of alternative non-microbiological techniques. Mol Cell Probes. 2011 Apr-Jun;25(2-3):69-77.

      [3] Ingebritson AL, Gibbs CP, Tong C, Srinivas GB. A PCR detection method for testing Mycoplasma contamination of veterinary vaccines and biological products. Lett Appl Microbiol. 2015 Feb;60(2):174-180.

       

      400-6111-883