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產(chǎn)品描述
細(xì)胞膜/細(xì)胞漿蛋白抽提試劑盒用于快速便捷分離細(xì)胞/組織細(xì)胞膜和細(xì)胞漿蛋白,抽提的膜蛋白不僅包括質(zhì)膜上的蛋白,也包括線粒體膜、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜以及高爾基體膜等上的膜蛋白。主要工作原理:通過勻漿適度破碎細(xì)胞,經(jīng)低速離心去除細(xì)胞核和少數(shù)未破碎的細(xì)胞產(chǎn)生的沉淀,隨后取上清高速離心獲得細(xì)胞膜沉淀和含有細(xì)胞漿蛋白的上清,然后通過優(yōu)化的膜蛋白抽提試劑從沉淀中抽提獲取膜蛋白。整個過程僅需約90 min即可完成,抽提得到的蛋白可以用于SDS-PAGE,Western、酶活性測定等后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
膜蛋白抽提試劑中含有蛋白酶抑制劑、磷酸酯酶抑制劑和EDTA等,后續(xù)不適合用于蛋白酶、磷酸酯酶等受這些抑制劑影響的酶的活性測定,但抽提獲得的膜蛋白或細(xì)胞漿蛋白適合用于檢測蛋白的磷酸化水平。
按照說明書步驟的用量(細(xì)胞2-5×107個;組織約100 mg),20127ES50/20127ES60可分別進(jìn)行50個和100個樣品的抽提,具體用量可根據(jù)不同的樣品體積進(jìn)行調(diào)整。
翌圣為您提供Western Blot實(shí)驗(yàn)整體解決方案,相關(guān)產(chǎn)品選購請參考:WB實(shí)驗(yàn)系列產(chǎn)品-選購指南
產(chǎn)品組分
組分編號 |
組分名稱 |
產(chǎn)品編號/規(guī)格 |
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20127ES50(50T) |
20127ES60(100T) |
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20127-A |
Reagent A試劑A |
50 mL |
100 mL |
20127-B |
Reagent B試劑B |
15 mL |
30 mL |
運(yùn)輸和保存方法
冰袋運(yùn)輸。-20℃保存,有效期1年。
注意事項(xiàng)
1)客戶需自備PMSF,PMSF需現(xiàn)配現(xiàn)用,建議在抽提試劑加入到樣品前2-3 min加入,以防失效。
2)利用本試劑盒抽提到的細(xì)胞膜/細(xì)胞漿蛋白可直接用BCA蛋白濃度測定試劑盒(增強(qiáng)型)(Yeasen Cat#20201)測定其濃度,但不適合用Bradford法測定。
3)為了您的安全和健康,請穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
4)本產(chǎn)品僅作科研用途!
使用方法
室溫融解并混勻試劑A和B,融解后立即置于冰上。取適量的試劑A和B備用,在使用前數(shù)分鐘內(nèi)加入PMSF,使其最終濃度為1 mM。
1 樣品準(zhǔn)備
1)細(xì)胞樣品
① 細(xì)胞收集
貼壁細(xì)胞:培養(yǎng)細(xì)胞約2-5×107個,PBS清洗一遍,用細(xì)胞刮子刮下細(xì)胞或用含有EDTA但不含胰酶的細(xì)胞消化液處理細(xì)胞,并用移液器吹打下細(xì)胞。離心收集細(xì)胞,吸除上清,留下細(xì)胞沉淀備用。
注:盡量避免用胰酶消化細(xì)胞,以免胰酶降解需抽提的目的膜蛋白。
懸浮細(xì)胞:培養(yǎng)細(xì)胞約2-5×107個,離心收集細(xì)胞,吸除上清,留下細(xì)胞沉淀備用。
② 細(xì)胞清洗
用適量冰浴預(yù)冷的PBS輕輕重懸細(xì)胞沉淀,取少量細(xì)胞用于計數(shù),剩余細(xì)胞4℃,600 g離心5 min沉淀細(xì)胞。棄上清,隨后4℃,600 g離心1 min,以沉淀離心管管壁上的殘留液體并進(jìn)一步沉淀細(xì)胞,盡最大努力吸盡殘留液體。
③ 細(xì)胞預(yù)處理:把1 mL試劑A(含PMSF)加入至上述細(xì)胞中,輕輕并充分懸浮細(xì)胞,冰浴放置10-15 min。
2)組織樣品
取約100 mg組織,用剪刀盡量小心剪切成細(xì)小的組織碎片。加入1 mL試劑A(含PMSF),輕輕懸浮組織碎片,冰浴放置10-15 min。
注:如果組織樣品比較少,也可以使用更少的組織量,例如30-50 mg,后續(xù)試劑的用量及操作步驟不變;組織用量較少時,最后獲得的膜蛋白也較少。
2 樣品的破碎及破碎效果的鑒定
① 樣品勻漿:把細(xì)胞懸液或組織樣品轉(zhuǎn)移到一適當(dāng)大小的冰浴預(yù)冷玻璃勻漿器中,勻漿約30-50下?!緞驖{效果與細(xì)胞類型和組織類型相關(guān),不同細(xì)胞或組織所需的勻漿次數(shù)有所不同,需自行優(yōu)化?!?/span>
② 通常在勻漿30次后取約2-3 µL勻漿液滴在蓋玻片上并在顯微鏡下觀察,如見細(xì)胞核周暈環(huán)(A shiny ring around the nuclei)或完整的細(xì)胞形態(tài),說明細(xì)胞仍完整。如果有70-80%的細(xì)胞均無核周暈環(huán)和完整細(xì)胞形態(tài),說明細(xì)胞已經(jīng)充分破碎,則進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。否則,重新勻漿10-30次直到細(xì)胞至少70%已經(jīng)破碎。同時記錄對于該細(xì)胞的勻漿次數(shù),通常在后續(xù)實(shí)驗(yàn)時不必再摸索勻漿次數(shù)。另外需注意特定的勻漿次數(shù)和勻漿器也有關(guān),需同時注意記錄使用的是哪一個勻漿器。
注:如果沒有適當(dāng)?shù)牟A驖{器,對于培養(yǎng)的細(xì)胞也可以采用反復(fù)凍融法來破碎細(xì)胞。把樣品在液氮和室溫依次反復(fù)凍融兩次,然后取少量樣品在顯微鏡下檢測細(xì)胞破碎的程度。如果細(xì)胞破碎的程度不足70%,可增加凍融次數(shù),直到細(xì)胞破碎的程度大于70%。
3 去除細(xì)胞核和未破碎的細(xì)胞
4℃,700 g離心10 min,小心收集上清液至一新的離心管中。
注:吸取上清時切勿接觸沉淀!可以有約30-50 µL上清液殘留不予吸取,以保證吸取的上清液有較高的純度。
4 沉淀細(xì)胞膜碎片
4℃,14,000 g離心30 min,以沉淀細(xì)胞膜碎片。
5 收集細(xì)胞漿蛋白
吸取上清至1新的離心管中,即為細(xì)胞漿蛋白,可-70℃保存?zhèn)溆?。吸取上清時可以有30-50 µL上清殘留,以避免接觸沉淀導(dǎo)致上清樣品被污染。
6 抽提膜蛋白
4℃,14,000 g離心10 s,盡最大努力吸盡上清。可以輕輕觸碰到沉淀,甚至吸走很少量的沉淀。加入試劑B 200 µL(如有必要,也可加大到300 µL),最高速劇烈Vortex 5 s重懸沉淀,冰浴5-10 min。重復(fù)前述步驟的vortex和冰浴孵育1-2次,以充分抽提膜蛋白。隨后,4℃,14,000 g離心5 min,收集上清即為細(xì)胞膜蛋白溶液???70℃保存?zhèn)溆?。對于一些有特殊用途的膜蛋白,可自行配制適當(dāng)?shù)哪さ鞍壮樘嵩噭┻M(jìn)行膜蛋白抽提。