脂多糖簡介
脂多糖(Lipopolysaccharide, LPS)是革蘭氏陰性細菌外膜的主要成分之一,由類脂A、核心多糖和O-抗原三部分組成,其中O-抗原決定了LPS的血清型,具有重要的生物學(xué)功能和作用機制。LPS在細菌正常生活狀態(tài)時不釋放,但在細菌菌體死亡破裂或人工方法裂解后會釋放出來,作為非特異性免疫原,與宿主效應(yīng)細胞相互作用,引起機體發(fā)熱、彌散性血管內(nèi)凝血、多器官機能衰竭等。
脂多糖作用機制
LPS的毒性主要通過與宿主細胞的TLR4受體結(jié)合來發(fā)揮,這一過程涉及內(nèi)毒素結(jié)合蛋白、CD14分子和MD-2分子的協(xié)同作用。LPS與TLR4結(jié)合后,激活細胞內(nèi)信號傳導(dǎo)途徑,包括髓樣分化因子88(MyD88)、IL-1受體相關(guān)激酶(IRAK)等,最終激活轉(zhuǎn)錄因子NF-κB,導(dǎo)致炎癥因子的產(chǎn)生和釋放。
圖1.脂多糖信號通路的示意圖[1]
脂多糖應(yīng)用
LPS在生物醫(yī)學(xué)研究中具有重要應(yīng)用,例如在研究神經(jīng)炎癥模型中,LPS常被用作誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)的試劑,模擬由革蘭氏陰性菌感染引起的炎癥過程。翌圣生物提供來源于大腸桿菌的2種脂多糖,產(chǎn)品相關(guān)介紹如下:
貨號 |
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名稱 |
脂多糖來源于大腸桿菌O55:B5 |
脂多糖來源于大腸桿菌O111:B4 |
血清型 |
O55:B5 |
O111:B4 |
主要應(yīng)用 |
體外細胞活化; 用于內(nèi)毒素LAL檢測; 作為疫苗佐劑增強免疫原性; 用于感染和炎癥反應(yīng)機制的研究; 可能更適合于體外細胞活化和炎癥研究。 |
刺激體內(nèi)豬肝臟組織和體外仔豬回腸組織的炎癥反應(yīng); 刺激體外自然殺手(NK)細胞和肝B細胞; 誘發(fā)標準兔模型中的關(guān)節(jié)炎; 可能更適合于研究B細胞激活和NOS誘導(dǎo)。 |
相同點 |
兩者均可通過與宿主細胞表面的Toll樣受體4(TLR4)結(jié)合來激活先天性免疫系統(tǒng)細胞,引發(fā)炎癥反應(yīng); 兩者都具有免疫原性,能夠刺激免疫細胞產(chǎn)生炎癥因子,用于模擬細菌感染過程; 兩者都廣泛應(yīng)用于生物醫(yī)學(xué)研究,特別是在炎癥和免疫反應(yīng)機制的研究中。 |
脂多糖炎癥模型
LPS(脂多糖)是一種能夠誘導(dǎo)多種炎癥模型建立的內(nèi)毒素,可以誘導(dǎo)多種炎癥模型:如
1)急性肺損傷(ALI)模型:通過腹腔注射或氣管給予LPS,建立急性肺損傷(ALI)模型。
2)急性胰腺炎(AP)模型:LPS與Caerulein(雨蛙素)聯(lián)合使用,建立急性胰腺炎模型。
3)急性肝衰竭模型:LPS與D-(+)-氨基半乳糖聯(lián)合使用,誘導(dǎo)急性肝衰竭模型。
4)敗血癥模型:通過腹腔注射LPS,建立膿毒癥模型。
5)牙周炎模型:在小鼠的牙齦注射LPS誘導(dǎo)牙周炎模型。
6)RAW264.7細胞炎癥模型:LPS可以刺激RAW264.7細胞,建立體外細胞炎癥模型。
7)急性炎癥小鼠模型:通過尾靜脈注射或腹腔注射LPS,建立急性炎癥小鼠模型。
以下面4種炎癥模型為例,為您提供詳細的實驗?zāi)P桶咐?,僅供參考。
4.1 LPS誘導(dǎo)大鼠急性腎損傷模型
4.1.1 實驗方法
實驗對象:2-3月齡雄性小鼠。
實驗方法:禁食禁飲6小時后稱量體重,按20 mg/kg體重腹腔注射新鮮配制的LPS溶液或PBS溶液,給藥24h后收集實驗標本。
動物處理:
1)麻醉:腹腔注射3%體積的戊巴比妥麻醉小鼠;
2)待小鼠達到麻醉效果后,快速從眼球處取血,收集在EP管中,靜置約2-3h后離心(3000 rpm,10分鐘),收集上清保存于-80℃冰箱備用;
3)取血后將小鼠固定于解剖板,剪開小鼠腹腔、胸腔等,將輸液針從心尖部位刺入小鼠左心室,推注生理鹽水,直至觀察到小鼠肺、肝臟顏色變?yōu)榈t色接近于白色時停止注射生理鹽水(大約30 mL);
4)停止灌注,找出雙側(cè)腎臟,摘取[2]。
4.1.2實驗結(jié)果及圖片
腎臟HE和PAS結(jié)果顯示,LPS誘導(dǎo)的LPS組出現(xiàn)了病理損傷,近端腎小管上皮細胞脫落、腎小管結(jié)構(gòu)紊亂,管腔擴張,胞漿空泡化和間質(zhì)水腫。
圖2.不同處理方法的小鼠腎組織HE染色和PAS染色結(jié)果圖[2]
4.2 LPS誘導(dǎo)大鼠膽色素結(jié)石模型
4.2.1實驗方法
實驗對象:6周齡雄性SD大鼠,體重為220 g左右。
實驗方法:分別設(shè)置對照組(Control)、模型組(Model)等。模型組通過PE管注入LPS(給藥劑量為5 mg/kg,濃度為1 mg/mL),分別在第3、6、9、12天給藥。每次注射藥物后將PE管關(guān)閉12h,然后重新打開。實驗開始至第16天后,取血清、膽汁和肝臟進行后續(xù)實驗。
動物處理:腹腔注射戊巴比妥鈉(濃度為3 mg/mL,劑量為30 mg/kg)進行麻醉,大鼠麻醉后腹部備皮、消毒,用剪刀在腹部中央剪開一道約5 cm的創(chuàng)口,找到膽總管,將PE引流管插入膽總管并固定,將引流管另一端從頸部后部導(dǎo)出并固定,建立皮下通道。期間通過導(dǎo)出的引流管間斷注入LPS后閉管。造模15天后,取大鼠膽汁、血清和肝臟樣本。膽汁樣本進行膽汁涂片,肝臟樣本進行病理和分子實驗[3]。
4.2.2實驗結(jié)果及圖片
膽汁涂片結(jié)果如圖3所示,對照組大鼠的涂片較為干凈,且未見結(jié)晶。而模型組大鼠膽汁明顯渾濁,有黃色結(jié)晶形成,意味著造模成功。
圖3.各組大鼠膽汁涂片[3]
HE染色結(jié)果如圖4所示,對照組大鼠肝組織結(jié)構(gòu)比較正常,染色清晰,細胞表現(xiàn)規(guī)整,無其他明顯病變。模型組大鼠肝臟大部分肝細胞發(fā)生腫脹,胞體增大,部分胞漿丟失呈網(wǎng)狀或顆粒狀,胞核皺縮深染。
圖4.各組HE染色觀察肝臟組織的病理變化[3]
4.3 LPS攻毒斷奶仔豬脾臟
4.3.1實驗方法
實驗對象:21日齡健康且體重(8.02±0.06)kg 的斷奶仔豬。
實驗方法:CON組和LPS組飼喂基礎(chǔ)日糧,LPS+PEO組和LPS+CEO組分別飼喂添加500 mg/kg PEO和CEO的日糧。49日齡時,LPS組、LPS+PEO組和LPS+CEO組仔豬分別腹膜注射0.1 mg/kg體重的大腸桿菌LPS(血清型O55:B5),CON組仔豬注射等體積的無菌生理鹽水,4 h后,稱重后屠宰。
動物處理:剖開腹腔,采集脾臟組織,測定脾臟指數(shù)。取少量脾臟樣品加入0.9%生理鹽水進行稀釋并利用均質(zhì)器勻漿,4℃、3500 r/min離心15 min,取上清液用于免疫指標和抗氧化指標的測定[4]。
4.3.2實驗結(jié)果及圖片
LPS組的脾臟指數(shù)顯著升高,提示脾臟可能受到了損傷。
圖5.各組斷奶仔豬的脾臟指數(shù)[4]
4.4 巨噬細胞炎癥模型構(gòu)建
4.4.1實驗方法
實驗對象:巨噬細胞。
實驗方法:當(dāng)細胞生長至匯合度約90%時,棄去上清液,PBS沖洗3次。采用細胞刮刀將細胞刮下,離心5 min,使用4 mL完全培養(yǎng)基重懸細胞后進行計數(shù)。將細胞按每孔5x105個接種于6孔板中。將細胞隨機分為空白對照組(Con組:貼壁12 h后,給予完全培養(yǎng)基2 mL,培養(yǎng)4 h)和炎癥模型組(LPS組:貼壁12 h后,給予含有10 μg/mL LPS的完全培養(yǎng)基2 mL,培養(yǎng)4 h)。然后采用多種方法分析α微管蛋白乙酰轉(zhuǎn)移酶1(αTAT-1)等的變化情況[5]。
4.4.2實驗結(jié)果及圖片
通過RT-qPCR手段檢測αTAT-1等蛋白mRNA表達變化,結(jié)果顯示:相比于Con組,LPS組中αTAT-1和NLRP3的mRNA表達顯著增加,表明αTAT-1和NLRP3在LPS介導(dǎo)的巨噬細胞炎癥中表達上升。
圖6.巨噬細胞中αTAT-1等蛋白mRNA表達變化(a:αTAT-1;b:α-tubulin;c:NLRP3)[5]
相關(guān)產(chǎn)品推薦
產(chǎn)品名稱 |
主要作用 |
產(chǎn)品貨號 |
產(chǎn)品規(guī)格 |
刺激免疫應(yīng)答,用于炎癥相關(guān)研究 |
60747ES08/10 |
5/10 mg |
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刺激免疫應(yīng)答,用于炎癥相關(guān)研究 |
60748ES08/10 |
5/10 mg |
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聯(lián)合LPS誘導(dǎo)胰腺炎模型 |
60321ES03 |
1 mg |
|
NF-κB選擇性抑制劑 |
53852ES05/08 |
2/5 mg |
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下調(diào) iNOS |
57667ES08/10 |
5/10 mg |
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NF-KB通路激活劑 |
54494ES76/80 |
500 mg/1 g |
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TLR4信號的選擇性抑制劑,具有抗炎活性 |
53767ES05/08 |
2/5 mg |
|
38MAPK抑制劑,具有抗炎和抗關(guān)節(jié)炎活性,可緩解疼痛 |
57845ES05/08/10/50 |
2/5/10/50 mg |
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抑制LPS誘導(dǎo)的TNF- alpha釋放 |
50810ES08/10 |
5/10 mg |
|
抑制NF-κB p65與DNA結(jié)合阻止IκB-α磷酸化 |
56084ES08/10/25 |
5/10/25mg |
|
抑制LPS刺激的COX-2表達和NF-KB活化 |
55496ES76 |
500 mg |
參考文獻
[1]王穎.脂多糖信號通路中的蛋白質(zhì)修飾[J].中國生物化學(xué)與分子生物學(xué)報,2008,(06):505-511.DOI:10.13865/j.cnki.cjbmb.2008.06.013.
[2]戴晴.維生素D受體對膿毒癥相關(guān)急性腎損傷糖代謝重編程的影響研究[D].中南大學(xué),2023.DOI:10.27661/d.cnki.gzhnu.2023.000345.
[3]張震.白藜蘆醇調(diào)控Nrf2表達及易位在膽色素結(jié)石形成中的作用機制研究[D].中國醫(yī)科大學(xué),2023.DOI:10.27652/d.cnki.gzyku.2023.002120.
[4]林慶州,陳奕穎,宋心茹,等.植物精油對脂多糖攻毒斷奶仔豬脾臟損傷的保護作用[J/OL].中國畜牧雜志,1-13[2024-08-15].https://doi.org/10.19556/j.0258-7033.20240104-02.
[5]李尊泰.Nb_2C納米片層通過αTAT-1下調(diào)微管乙?;街委煷笫笱乐苎椎臋C制研究[D].吉林大學(xué),2023.DOI:10.27162/d.cnki.gjlin.2023.007717.