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      首頁 / NGS測(cè)序 / 產(chǎn)品應(yīng)用詳情

      表觀專題:你的CUT&tag加spike in了嗎

      組蛋白作為染色體結(jié)構(gòu)的核心組分,在基因表達(dá)的影響方面作用較大,而其中影響最大的是組蛋白修飾的改變。而組蛋白修飾作為表觀組學(xué)重要研究?jī)?nèi)容之一,主要是通過不同的組蛋白修飾形成異染色質(zhì)或者常染色質(zhì)狀態(tài),從而使得基因的表達(dá)呈現(xiàn)關(guān)閉或開放的狀態(tài)。


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      圖:組蛋白修飾的表觀調(diào)控

      組蛋白可以發(fā)生各種各樣的修飾,像甲基化修飾、乙?;揎棥⒘姿峄揎?、泛素化修飾等,而目前在組學(xué)研究中,研究最為透徹的是H3K4me3、H3K9me3、H3K27me3、H3K27ac、H3K36me3。不同的組蛋白修飾有不同的功能,同時(shí)在基因組上的位置分布也不同。常見的處于異染色質(zhì)區(qū)域作為基因沉默的marker的有H3K9me3、H3K27me3和H4K20me3,而處于常染色質(zhì)區(qū)域作為基因激活marker的有H3K4me3、H3K36me3和H3K79me3。


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      圖:染色體結(jié)構(gòu)圖

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      圖:不同組蛋白修飾在基因組中的位置分布

       

      作為DNA-蛋白互作尤其是組蛋白修飾研究的新興技術(shù),CUT&tag的出現(xiàn)引發(fā)了一波表觀熱潮。尤其是其屬于細(xì)胞內(nèi)的原位實(shí)驗(yàn),相較于ChIP-seq來說,優(yōu)勢(shì)明顯。CUT&tag實(shí)驗(yàn)無需甲醛交聯(lián)(對(duì)于一些結(jié)合較弱的轉(zhuǎn)錄因子,可以進(jìn)行輕微甲醛交聯(lián))和超聲片段化,這無疑降低了實(shí)驗(yàn)的門檻。同時(shí),CUT&tag實(shí)驗(yàn)中,Tn5酶的應(yīng)用使得一步法建庫成為可能。該實(shí)驗(yàn)仍然利用了Tn5酶的特性,在轉(zhuǎn)座切割時(shí),原位切割的DNA上會(huì)攜帶Tn5酶的核心序列。進(jìn)行文庫構(gòu)建步驟時(shí),含有Tn5酶核心序列的接頭能夠直接連接和擴(kuò)增就能將目的蛋白特異性抗體靶向結(jié)合DNA序列直接擴(kuò)增成文庫,無需繁瑣的末修、加A和接頭連接等步驟。更重要的是,Tn5酶的使用,使得CUT&Tag能較好的應(yīng)用在高通量單細(xì)胞表觀研究中。目前已經(jīng)有成熟的偶聯(lián)含Tn5酶核心序列的Gel beads投入使用,我們進(jìn)行常規(guī)CUT&tag實(shí)驗(yàn)后,進(jìn)行單細(xì)胞捕獲環(huán)節(jié),gel beads上的核心序列會(huì)與細(xì)胞內(nèi)特異性酶切DNA進(jìn)行偶聯(lián),最后,通過常規(guī)的Tn5酶切建庫的方式進(jìn)行文庫擴(kuò)增,擴(kuò)增后的序列會(huì)攜帶barcode進(jìn)行細(xì)胞標(biāo)記,從而實(shí)現(xiàn)單細(xì)胞CUT&tag研究。


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      圖:scCUT&tag實(shí)驗(yàn)流程,from Steven J. W. et al, 2021, Nature Biotechnology

       

      在DNA-蛋白互作技術(shù)研究中,spike in的添加一直是一大傳統(tǒng)。當(dāng)然了,spike in的添加不僅僅只在DNA-蛋白互作技術(shù)研究中被應(yīng)用,常見的如RNA-seq中,也有大量報(bào)道進(jìn)行了spike in的添加。Spike in可以對(duì)樣本中真實(shí)基因的表達(dá)進(jìn)行校正,同時(shí)也能作為恒量實(shí)驗(yàn)好壞的質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)。


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      圖:spike in的優(yōu)勢(shì),F(xiàn)rom K.C et al. 2016

      作為DNA-蛋白互作技術(shù)研究的金標(biāo)準(zhǔn)和老大哥,ChIP-seq實(shí)驗(yàn)中主要是添加外源的果蠅基因組用于spike in。而spike in的添加,能讓之前因PCR循環(huán)或測(cè)序偏好性影響而未檢測(cè)到的表達(dá)差異的基因在spike in normalization后,顯示出表達(dá)差異。


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      圖:ChIP-seq實(shí)驗(yàn)中spike in添加的優(yōu)勢(shì)

       

      除了ChIP-seq外,CUT&RUN技術(shù)在研發(fā)報(bào)道時(shí)期,也是有spike in的添加。CUT&RUN進(jìn)行DNA-蛋白互作研究時(shí),已所需樣本數(shù)較低引起轟動(dòng),而spike in的添加,使得不同樣本投入量得結(jié)果顯示更真實(shí),因?yàn)榧?xì)胞投入量更低,在特異抗體靶向捕獲時(shí),獲得的reads數(shù)也會(huì)更低。傳統(tǒng)數(shù)據(jù)分析無法體現(xiàn)細(xì)胞低投入,而加入spike in后,不同細(xì)胞投入數(shù),特異性捕獲的DNA reads數(shù)也不同。

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      圖:CUT&RUN實(shí)驗(yàn)中加入spike in優(yōu)勢(shì)

      翌圣生物創(chuàng)造性的在CUT&tag實(shí)驗(yàn)中,傳承了spike in的優(yōu)勢(shì),在CUT&tag實(shí)驗(yàn)中,加入三段不同長(zhǎng)度的lamda DNA組成spikein mix,恒量spike in的加入,讓你的qPCR結(jié)果不受投入量影響,定量更準(zhǔn)確。

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      圖:CUT&Tag實(shí)驗(yàn)中加入spike in

      Spike in加入后,進(jìn)行文庫構(gòu)建,建庫前spikein-1:spikein-2:spikein-3=1:3:10,文庫構(gòu)建后,比例變化不大。對(duì)建庫前的spike in和建庫后的spike in進(jìn)行回歸方程計(jì)算,發(fā)現(xiàn)建庫前和建庫后的spike in呈現(xiàn)線性變化,R的平方值都達(dá)到0.99以上,表明spike in的加入,可以讓建庫后的DNA能夠進(jìn)行定量,且能定量回溯到建庫前DNA的含量。

      說了這么多,spike in的優(yōu)勢(shì)你get到了么?

      那么,你的CUT&tag實(shí)驗(yàn)中加spike in了嗎?

       

      翌圣產(chǎn)品速遞

      產(chǎn)品定位

      產(chǎn)品名稱

      產(chǎn)品編號(hào)

      規(guī)格

      CUT&Tag建庫試劑盒

      Hieff NGS? G-Type In-Situ DNA Binding Profiling Library Prep Kit for Illumina?

      12598ES04/12/48

      4 T/12 T/48 T

      接頭

      Hieff NGS? Tagment Index Kit for Illumina? (96 Index)

      12610ES96

      96 index

       

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