FuniCut™系列內(nèi)切酶是通過(guò)基因工程重組技術(shù)，可在5~15 min內(nèi)精確完成DNA切割的快速限制性內(nèi)切酶，適用于快速切割質(zhì)粒DNA、PCR產(chǎn)物、基因組DNA等。FuniCut™系列快速內(nèi)切酶共用一種酶切緩沖液，從而簡(jiǎn)化了酶切反應(yīng)體系，另外，有良好的酶活冗余度，可輕松處理底物過(guò)量或困難模板的酶切。

 

產(chǎn)品組分

組分編號(hào)	組分名稱	產(chǎn)品規(guī)格
15052-A	FuniCut™ DpnI	50 μL
15052-B	10×FuniCut™ Buffer	1 mL
15052-C	10×FuniCut™ Color Buffer	1 mL

 

運(yùn)輸與保存方法

冰袋運(yùn)輸。-20°C保存，有效期2年。

 

識(shí)別位置

5'-GA^m6↓TC-3'

3'-CT↑A^m6G-5'

 

推薦反應(yīng)條件

1× FuniCut™ 緩沖液；

最適37°C孵育。

 

失活條件

80°C孵育20 min。

 

注意事項(xiàng)

1）3 h孵育未表現(xiàn)星號(hào)活性，延時(shí)酶切可能出現(xiàn)星號(hào)活性；

2）受EcoBI甲基化影響，序列可能重疊，剪切阻斷；

3）為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并佩戴一次性手套操作；

4）本產(chǎn)品僅作科研用途！

 

質(zhì)量控制

1. 功能活性檢測(cè)：最適反應(yīng)溫度下，在20 μL反應(yīng)體系中，1 μL酶能夠在15 min內(nèi)完全消化1 μg PUC19 DNA。

2. 超長(zhǎng)時(shí)間孵育檢測(cè)：最適反應(yīng)溫度下，將1 μL酶與1 μg PUC19 DNA共孵育3 h，未檢測(cè)到其他核酸酶污染或星號(hào)活性引起的底物非特異性降解，但延長(zhǎng)孵育時(shí)間可能出現(xiàn)星號(hào)活性。

3. 酶切-連接-再酶切檢測(cè)：最適反應(yīng)溫度下，使用1 μL酶消化底物，回收酶切產(chǎn)物，在22°C下使用適量T4 DNA連接酶可以將酶切產(chǎn)物重新連接，將連接產(chǎn)物再次回收后，使用相同的內(nèi)切酶可以重新切開(kāi)連接產(chǎn)物。

4. 非特異性性內(nèi)切酶活性檢測(cè)：最適反應(yīng)溫度下，將1 μL酶與1 μg超螺旋質(zhì)粒DNA共同溫育4 h，使用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)，質(zhì)粒DNA仍然處于超螺旋狀態(tài)。

 

使用方法

1. DNA快速酶切流程

1）按如下建議的加樣順序配制體系反應(yīng)液（冰上操作）：

組分	質(zhì)粒DNA	PCR產(chǎn)物	基因組DNA
ddH2O	15 μL	16 μL	30 μL
10×FuniCut™ Buffer或10×FuniCut™ Color Buffer	2 μL	3 μL*	5 μL
底物DNA	2 μL（~1 μg）	10 μL (~0.2 μg)	10 μL (5 μg)
FuniCut™ DpnI	1 μL	1 μL	5 μL
Total	20 μL	30 μL	50 μL

*本體系指已純化后的PCR產(chǎn)物。未純化的PCR產(chǎn)物具備一定的離子強(qiáng)度，10×FuniCut ^TM Buffer加入量可適當(dāng)減少至2 μL。若下一步進(jìn)行克隆等實(shí)驗(yàn)，酶切前需純化PCR產(chǎn)物。

2）輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時(shí)離心以收集掛壁液滴。

3）37°C孵育15 min（質(zhì)粒），或15~30 min（PCR 產(chǎn)物），或30~60 min（基因組 DNA）。

4）80°C孵育20 min即可使酶失活，停止反應(yīng)（可選）。

2. 雙酶切或多酶切

1）每種內(nèi)切酶的用量為1 μL，并根據(jù)需要適當(dāng)擴(kuò)大反應(yīng)體系。

2）所有內(nèi)切酶的體積總和不得超過(guò)總反應(yīng)體系的1/10。

3）如果選用的幾種內(nèi)切酶的最適反應(yīng)溫度不同，應(yīng)先以最適溫度低的酶開(kāi)始酶切，再添加最適溫度較高的酶，以較高的溫度進(jìn)行孵育。