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RCA (E1A)基因拷貝數(shù)檢測(cè)試劑盒可用于定量分析檢測(cè)各種使用腺病毒載體相關(guān)的細(xì)胞治療產(chǎn)品和基因治療產(chǎn)品中可能發(fā)生的復(fù)制型腺病毒(Replication-competent Adenoviruses, RCA)的潛在風(fēng)險(xiǎn);還可用于定量分析檢測(cè)生物制品中宿主細(xì)胞,如HEK293和HEK293T細(xì)胞來源的風(fēng)險(xiǎn)基因E1A殘留DNA的含量。
本試劑盒針對(duì)腺病毒上E1A基因序列設(shè)計(jì)特異性引物,采用探針法熒光定量PCR原理,快速特異的檢測(cè)復(fù)制型腺病毒RCA風(fēng)險(xiǎn)情況以及宿主細(xì)胞來源的E1A殘留DNA,其定量限可低至4.1 copies/μL水平,且配套有RCA (E1A) DNA Control(DNA定量參考品)。該試劑可與本公司的磁珠法殘留DNA樣本前處理試劑盒(Cat#18461ES/18462ES)配套使用。
組分信息
組分編號(hào) |
組分名稱 |
41321ES50 |
41321ES60 |
41321-A |
RCA (E1A) qPCR Mix |
0.75 mL |
1.5 mL |
41321-B |
RCA (E1A)Primer&Probe Mix |
200 μL |
400 μL |
41321-C |
DNA Dilution Buffer |
1.8 mL×2管 |
1.8 mL×4管 |
41321-D |
RCA (E1A) DNA Control (1.64×107 copies/μL) |
25 μL |
50 μL |
41321-E |
IC* |
50 μL |
100 μL |
*IC:Internal control,內(nèi)部對(duì)照
儲(chǔ)存條件
1. 所有組分均干冰運(yùn)輸,-25~-15℃保存,有效期2年。其中,41321-A和41321-B均需避光保存。
2. 收到貨后,請(qǐng)檢查共5個(gè)組分是否齊全,并立即放入對(duì)應(yīng)的保存溫度中儲(chǔ)存。
注意事項(xiàng)
1. 本產(chǎn)品僅作科研用途。
2. 為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并佩戴一次性手套操作。
3. 使用本試劑前請(qǐng)仔細(xì)閱讀說明書,實(shí)驗(yàn)應(yīng)規(guī)范操作,包括樣本處理、反應(yīng)體系的配制及加樣。
4. 每個(gè)組分在使用前都應(yīng)充分震蕩混勻,低速離心。
適用機(jī)型
包含但不限于以下儀器:
Thermo Scientific:ABI 7500,ABI Quant Studio 5;
Bio-Rad:CFX96 Optic Module;
上海宏石醫(yī)療科技:SLAN-96S。
使用說明
1. RCA (E1A) DNA Control定量參考品的稀釋和標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
用試劑盒中提供的DNA Dilution Buffer(DNA稀釋液)將RCA (E1A) DNA Control定量參考品進(jìn)行梯度稀釋*,稀釋濃度依次為1.64×106 copies/μL、1.64×105 copies/μL、1.64×104 copies/μL、1.64×103 copies/μL、1.64×102 copies/μL、1.64×101 copies/μL。具體操作如下:
1)將試劑盒中的RCA (E1A) DNA Control定量參考品和DNA Dilution Buffer置于冰上融化,待完全融化后,輕微振蕩混勻,低速離心10 sec。
2)取6支潔凈的1.5 mL離心管,分別標(biāo)記為Std0、Std1、Std2、Std3、Std4、Std5。
3)在標(biāo)記為Std0的1.5 mL離心管中加入90 μL DNA Dilution Buffer和10 μL RCA DNA Control定量參考品,Std0即稀釋為1.64×106 copies/μL的濃度,振蕩混勻后低速離心10 sec,該濃度可分裝置于-25~-15℃短期保存(不超過3個(gè)月)**,使用時(shí)避免反復(fù)凍融。
4)在Std1、Std2、Std3、Std4、Std5離心管中先分別加入90 μL DNA Dilution Buffer***,再進(jìn)行梯度稀釋****,具體稀釋方法如下:
稀釋管 |
稀釋比例 |
終濃度 |
Std1 |
10 μL Std0 + 90 μL DNA Dilution Buffer |
1.64×105 copies/μL |
Std2 |
10 μL Std1 + 90 μL DNA Dilution Buffer |
1.64×104 copies/μL |
Std3 |
10 μL Std2 + 90 μL DNA Dilution Buffer |
1.64×103 copies/μL |
Std4 |
10 μL Std3 + 90 μL DNA Dilution Buffer |
1.64×102 copies/μL |
Std5 |
10 μL Std4 + 90 μL DNA Dilution Buffer |
1.64×101 copies/μL |
表1 標(biāo)準(zhǔn)品梯度稀釋
*每個(gè)濃度做3個(gè)復(fù)孔,該試劑可測(cè)試1.64×105 copies/μL~1.64×101 copies/μL線性范圍。若需要,可適當(dāng)擴(kuò)大或縮小線性范圍。
**為減少反復(fù)凍融次數(shù)和避免污染,建議初次使用時(shí)將DNA定量參考品分裝儲(chǔ)存于-25~-15℃。
***已融化未使用的DNA稀釋液可保存于2-8℃ 7天,若長(zhǎng)時(shí)間不用,請(qǐng)放置于-25~-15℃。
****為確保模板完全混勻,每個(gè)梯度稀釋時(shí)需輕微震蕩混勻約15 sec。
2.待測(cè)樣本TS的制備
根據(jù)實(shí)驗(yàn)設(shè)置待測(cè)樣本TS,具體操作如下:
取100 μL待測(cè)樣本加入1.5 mL潔凈的離心管中,標(biāo)記為TS,進(jìn)行樣本前處理,制備待測(cè)樣本TS純化液。
3. 樣本加標(biāo)回收質(zhì)控ERC的制備
根據(jù)需要設(shè)置ERC中的RCA (E1A) DNA標(biāo)準(zhǔn)品濃度,以制備加1.64×104copies RCA (E1A) DNA量的ERC為例*,具體操作如下:
1)取100 μL待測(cè)樣本加入1.5 mL潔凈的離心管中,再加入10 μL Std3,混勻,標(biāo)記為ERC。
2)加標(biāo)回收ERC和同批待測(cè)樣本一起進(jìn)行樣本前處理,制備加標(biāo)回收ERC純化液。
*一般建議樣本加標(biāo)量設(shè)置在樣本中目的基因RCA (E1A)實(shí)際含量的0.8~1.5倍,如果樣品中目的基因含量低于定量限,加標(biāo)量應(yīng)設(shè)置到定量限之內(nèi),以保證檢測(cè)結(jié)果的可靠性。
4. 陰性抽提質(zhì)控NCS的制備
根據(jù)實(shí)驗(yàn)設(shè)置陰性抽提質(zhì)控NCS,具體操作如下:
1)取100 μL樣本基質(zhì)溶液(或DNA稀釋液)加入1.5 mL潔凈的離心管中,標(biāo)記為NCS。
2)陰性質(zhì)控NCS和同批待測(cè)樣本一起進(jìn)行樣本前處理,制備成陰性質(zhì)控NCS純化液。
5. 無模板對(duì)照NTC的制備
根據(jù)實(shí)驗(yàn)設(shè)置無模板對(duì)照NTC,具體操作如下:
1)無模板對(duì)照NTC無需進(jìn)行樣本前處理,在qPCR法檢測(cè)殘留DNA含量階段開始配置即可。
2)每管或孔中NTC樣本為20 μL Mix混合液即15 μL RCA (E1A) qPCR Mix + 4 μL RCA Primer&Probe Mix + 1 μL IC,再加10 μL DNA Dilution Buffer,建議配置3個(gè)重復(fù)孔的量。
6. 反應(yīng)體系
組分 |
體積(μL) |
RCA (E1A) qPCR Mix* |
15 |
RCA (E1A) Primer&Probe Mix |
4 |
IC |
1 |
DNA Template** |
10 |
總體積*** |
30 |
表2 標(biāo)準(zhǔn)品反應(yīng)體系
*根據(jù)反應(yīng)孔數(shù)計(jì)算本次所需Mix混合液總量:Mix混合液=(反應(yīng)孔數(shù)+2)× (15+4+1) μL(含有2孔的損失量)。通常,每個(gè)樣本做3個(gè)重復(fù)孔。
**反應(yīng)孔數(shù)=(5個(gè)濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)曲線+1個(gè)無模板對(duì)照NTC+1個(gè)陰性抽提質(zhì)控NCS+待測(cè)樣TS個(gè)數(shù)+待測(cè)樣本對(duì)應(yīng)加標(biāo)回收ERC個(gè)數(shù))× 3。
NTC (No Template Control):DNA Dilution Buffer
NCS (Negative Control Solution):樣本基質(zhì)溶液或DNA Dilution Buffer進(jìn)行樣本前處理后,所得純化液為NCS
TS (Test Sample):待測(cè)樣本
ERC (Extraction Recovery Control):待測(cè)樣本中加入如10 μL的1.64×103 copies/μL標(biāo)準(zhǔn)品后進(jìn)行樣本前處理,所得純化液為加標(biāo)回收ERC
***加樣完成密封好管子后,請(qǐng)低速離心10 sec將管壁的液體離心收集至管底,再震蕩混勻5 sec以上,完全混勻反應(yīng)液,再低速離心10 sec將管壁的液體離心收集至管底,如有氣泡,需將氣泡排盡。
下表為參考板位:
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
11 |
12 |
A |
NTC |
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待測(cè)樣本TS1 |
待測(cè)樣本TS1 |
待測(cè)樣本TS1 |
|
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std1 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std1 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std1 |
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B |
NTC |
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待測(cè)樣本TS2 |
待測(cè)樣本TS2 |
待測(cè)樣本TS2 |
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標(biāo)準(zhǔn)曲線Std2 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std2 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std2 |
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C |
NTC |
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待測(cè)樣本TS3 |
待測(cè)樣本TS3 |
待測(cè)樣本TS3 |
|
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std3 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std3 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std3 |
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|
|
D |
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|
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std4 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std4 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std4 |
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|
E |
NCS |
|
樣本加標(biāo)ERC1 |
樣本加標(biāo)ERC1 |
樣本加標(biāo)ERC1 |
|
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std5 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std5 |
標(biāo)準(zhǔn)曲線Std5 |
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|
F |
NCS |
|
樣本加標(biāo)ERC2 |
樣本加標(biāo)ERC2 |
樣本加標(biāo)ERC2 |
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|
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|
|
G |
NCS |
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樣本加標(biāo)ERC3 |
樣本加標(biāo)ERC3 |
樣本加標(biāo)ERC3 |
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|
|
|
H |
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表3 上機(jī)參考板位
該示例是對(duì)RCA (E1A)基因拷貝數(shù)的qPCR法檢測(cè)操作的展示,檢測(cè)樣本包括:5個(gè)濃度梯度的RCA (E1A) DNA標(biāo)準(zhǔn)曲線、1個(gè)無模板對(duì)照NTC、1個(gè)陰性質(zhì)控NCS、3個(gè)待測(cè)樣本TS、3個(gè)加樣回收ERC。建議每個(gè)樣本做3個(gè)重復(fù)孔。
7. 擴(kuò)增程序參數(shù)設(shè)置(兩步法)(以ABI公司7500 qPCR儀、軟件版本2.0為例)
1)創(chuàng)建空白新程序,選擇絕對(duì)定量檢測(cè)模板。
2)創(chuàng)建2個(gè)檢測(cè)探針,Target 1命名為“RCA (E1A)-DNA”,選擇報(bào)告熒光基團(tuán)為“FAM”,猝滅熒光基團(tuán)為“None”;Target 2命名為“IC”,選擇報(bào)告熒光基團(tuán)為“CY5”,猝滅熒光基團(tuán)為“None”。參比熒光為“ROX”(參比熒光可根據(jù)儀器型號(hào)等情況,選擇是否需要添加)。
3)在“Assign target (s) to the selected wells”面板中,將標(biāo)準(zhǔn)曲線孔的“Task”一欄設(shè)置為“Standard”,并且在“Quantity”一欄分別賦值為“164000”、“16400”、“1640”、“164”、“16.4”(含義為每孔DNA濃度,單位為copies/μL),并且在相應(yīng)的“Sample Name”一欄命名為“164000copies/μL”、“16400copies/μL”、“1640copies/μL”、“164copies/μL”、“16.4copies/μL”;將無模板對(duì)照NTC孔的“Task”一欄設(shè)置為“NTC”;將陰性質(zhì)控NCS孔、待測(cè)樣本TS孔、樣本加標(biāo)回收ERC孔的“Task”一欄設(shè)置為“Unknown”,并且在相應(yīng)的“Sample Name”一欄中分別命名為“NCS”、“TS”、“ERC”,參比熒光勾選“ROX”,之后點(diǎn)擊“Start Run”,開始儀器運(yùn)行。
4)擴(kuò)增程序設(shè)置:設(shè)置兩步法擴(kuò)增程序,反應(yīng)體積30 μL。
循環(huán)步驟 |
溫度(℃) |
時(shí)間 |
循環(huán)數(shù) |
預(yù)變性 |
95℃ |
5 min |
1 |
變性 |
95℃ |
15 sec |
40 |
退火/延伸(收集熒光) |
60℃ |
30 sec |
表4 擴(kuò)增程序
8. qPCR結(jié)果分析
1)在“Analysis”的“Amplification Plot”面板中,系統(tǒng)會(huì)自動(dòng)給出“Threshold”,有時(shí)系統(tǒng)給出的“Threshold”離基線太近,導(dǎo)致復(fù)孔之間Ct相差甚遠(yuǎn),可手動(dòng)調(diào)節(jié)“Threshold”至合適位置,點(diǎn)擊“Analyze”。此時(shí)可在“Multicomponent Plot”初步查看擴(kuò)增曲線的形態(tài)是否正常。
2)在“Analysis”的“Standard Curve”面板中,可讀取標(biāo)準(zhǔn)曲線的R²、擴(kuò)增效率(Eff%)、斜率(Slope)、截距(Intercept)等。正常的標(biāo)曲:R²>0.99,擴(kuò)增效率在90%≤Eff%≤110%范圍內(nèi),Slope在-3.6~-3.1。
3)在“Analysis”的“View well table”面板中,“Quantity”一欄可讀取無模板對(duì)照NTC、陰性質(zhì)控NCS、待測(cè)樣本TS、樣本加標(biāo)回收ERC的檢測(cè)值,單位為copies/μL。
4)結(jié)果分析的參數(shù)設(shè)置需依據(jù)具體的機(jī)型及使用的軟件版本,一般也可由儀器自動(dòng)判讀。
5)根據(jù)待測(cè)樣本TS和樣本加標(biāo)回收ERC的檢測(cè)結(jié)果計(jì)算加標(biāo)回收率,加標(biāo)回收率要求在50%~150%之間。加標(biāo)回收率計(jì)算公式:回收率(%) = {樣本加標(biāo)測(cè)定值(eg.copies/µL)-樣本測(cè)定值(eg.copies/µL)}×洗脫體積(eg.µL) / DNA加入量理論值(eg.copies)×100%。
6)陰性質(zhì)控NCS的Ct值應(yīng)大于標(biāo)曲最低濃度Ct的均值。
7)無模板對(duì)照NTC的檢測(cè)結(jié)果應(yīng)為Undetermined或Ct值≥35。
8)待測(cè)樣本的Ct-IC值應(yīng)該與NTC的Ct-IC值一致或±1,如果待測(cè)樣本的Ct-IC值與NTC的Ct-IC值相比明顯增大,則表明樣本可能存在明顯抑制。如果同時(shí)測(cè)試加標(biāo)樣本,則優(yōu)先考慮樣本加標(biāo)回收率結(jié)果,IC結(jié)果作為參考。
Ver.CN20230731
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