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      Calcein-AM/PI Double Stain Kit Calcein-AM/PI活細胞/死細胞雙染試劑盒

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      產(chǎn)品說明書

      FAQ

      COA

      已發(fā)表文獻

      產(chǎn)品描述

      Calcein-AM是一種對活細胞進行熒光標(biāo)記的細胞染色試劑,發(fā)綠色熒光(Ex=490 nm, Em=515 nm)。 因其在傳統(tǒng)的Calcein(鈣黃綠素)基礎(chǔ)上引入乙酰甲氧基甲酯(AM)基團,增加了疏水性,使其能夠輕易穿透活細胞膜。一旦進入細胞后,Calcein-AM(本身不發(fā)熒光)被細胞內(nèi)的酯酶剪切形成膜非滲透性的極性分子Calcein,從而被滯留在細胞內(nèi)并發(fā)出強綠色熒光。與其它同類試劑(如BCECF-AM和CFDA)相比,由于Calcein, AM細胞毒性極低,是最適合用于活細胞染色的熒光探針,而且不會抑制任何的細胞功能,如增殖和淋巴球的趨化性。

      由于死細胞缺乏酯酶,Calcein-AM僅用于對活細胞的細胞生存能力測試和短期標(biāo)記。因此,Calcein-AM常常與死細胞熒光探針如碘化丙啶(PI)等聯(lián)合使用,同時進行活細胞和死細胞的熒光雙重染色。碘化丙啶(Propidium iodide,PI)不能穿過活細胞的細胞膜,僅能穿過死細胞膜的無序區(qū)域而到達細胞核,并嵌入細胞的DNA雙螺旋從而產(chǎn)生紅色熒光(Ex=535 nm, Em=617 nm),因此PI僅對死細胞染色。由于Calcein和PI-DNA都可被490 nm激發(fā),因此可用熒光顯微鏡同時觀察活細胞和死細胞。而用545 nm激發(fā),僅可觀察到死細胞。

      本試劑盒的工作原理就在于Calcein-AM和PI的雙重染料,來進行活細胞和死細胞的雙重染色標(biāo)記,從而進行活細胞和死細胞水平的分析。根據(jù)我司優(yōu)化的實驗體系,單次就200 µL細胞懸液進行染色,分別可以做500次(CAS: 40747ES76)和1000次(CAS: 40747ES80)檢測。


      產(chǎn)品組分

      編號

      組分

      產(chǎn)品編號/規(guī)格

      40747ES76

      (500T)

      40747ES80

      (1000T)

      40747-A

      Calcein-AM Solution (2 mM)

      50μL

      50μL×2

      40747-B

      PI Solution(1.5 mM)

      150μL

      150μL×2

      40747-C

      10×Assay Buffer

      50mL

      100mL



      運輸和保存方法

      冰袋運輸;其中A組分和B組分需-20℃避光干燥保存,C組分-20℃保存,經(jīng)常使用可放在4℃保存。一年有效。


      使用方法

      1. 工作液的配制

      1.1 1×Assay Buffer(反應(yīng)緩沖液)的配制

      從低溫冰箱內(nèi)取出10×Assay Buffer,根據(jù)單次用量無菌條件取出適量,用去離子水(dH2O)做10倍稀釋以得到1×Assay Buffer。

      1.2 1×染色工作液的配制

      1)先將低溫保存的Calcein-AM溶液 (2 mM)和PI溶液(1.5 mM)回到室溫20-30 min。
      意:第一次使用可對母液進行分裝,以減少反復(fù)凍融次數(shù)。 

      2)取5 µL Calcein-AM溶液 (2 mM)和15µL PI溶液(1.5 mM)加入5 mL 1×Assay Buffer,充分混勻。此時得到Calcein-AM的工作液濃度為2 μM,PI的工作液濃度為4.5 μM。由于不同細胞系的最佳染色條件不同,初次實驗建議做梯度實驗,以確定 Calcein-AM和PI的最適濃度。梯度篩選的原則為使用最低的探針濃度得到最好的熒光結(jié)果。
      注意:由于Calcein-AM的穩(wěn)定性比較差,此染色工作液必須現(xiàn)配現(xiàn)用,并且在當(dāng)天用完。

      2. 染色步驟

      2.1  對于貼壁細胞,先用細胞刮刀或者胰酶-EDTA消化細胞,之后離心收集細胞(1000 rpm,3 min)。

      對于懸浮細胞,直接離心(1000 rpm,3 min)收集細胞。

      2.2  去上清,用1×Assay Buffer充分清洗細胞2~3次,以充分去除殘留的酯酶活性。

      2.3  用1×Assay Buffer制備細胞懸液,使其密度為1×105~1×106細胞/mL。

      2.4  取100 µL染色工作液加入200 µL細胞懸液內(nèi),混勻,37℃孵育15 min。
      注意:如果需要,可延長孵育時間至30min。

      2.5  熒光顯微鏡下使用490±10 nm激發(fā)濾片同時檢測活細胞(黃綠色熒光)以及死細胞(紅色熒光)。另外,使用545 nm的發(fā)射濾片僅能觀察到死細胞。也可以直接在熒光酶標(biāo)儀下使用合適的濾片進行檢測。
      注意:可以使用以下方法來優(yōu)化得到兩種熒光染料的最佳工作濃度。

      a)用0.1%皂素或者0.1-0.5%地高辛孵育細胞10 min,或者用70%乙醇孵育細胞30 min,從而制備死細胞;

      b)用0.1-10 µM的PI溶液進行死細胞染色,以得到僅僅對細胞核染色,而不會對細胞質(zhì)染色的最佳工作濃度。

      c)用0.1-10 µM的Calcein-AM進行死細胞染色,以得到不會對細胞質(zhì)染色的最佳工作濃度。然后用此濃度進行活細胞染色,去觀察是否活細胞能被染色。


      注意事項

      1)由于Calcein-AM對濕度非常敏感,若是Calcein-AM溶液每次取完需要量后,必須緊緊密封蓋子。建議根據(jù)單次用量,分裝密封保存。Calcein-AM工作液必須現(xiàn)配現(xiàn)用。

      2)碘化丙啶(PI)有一定的致癌性,操作時一定要注意防護。若接觸到皮膚,需要立即用自來水清洗。

      3)為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。

      4)本產(chǎn)品僅作科研用途!


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