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      Hieff Mut? Site-Directed Mutagenesis Kit 定點(diǎn)突變?cè)噭┖?/h1>
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      產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)

      FAQ

      COA

      已發(fā)表文獻(xiàn)

      產(chǎn)品描述

      Hieff Mut™ Site-Directed Mutagenesis Kit是基于Hieff Clone™快速克隆技術(shù)的定點(diǎn)突變系統(tǒng)。使用本試劑盒,目標(biāo)質(zhì)粒擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)DpnI消化、Hieff Clone™重組環(huán)化后直接進(jìn)行轉(zhuǎn)化即可完成定點(diǎn)突變。該試劑盒由兩個(gè)模塊組成:Hieff® II Pfu DNA Polymerase擴(kuò)增模塊和Hieff Clone®快速克隆模塊。Hieff® II Pfu DNA Polymerase超高的保真度顯著降低了擴(kuò)增過(guò)程中引入新突變的可能性,其卓越的長(zhǎng)片段擴(kuò)增能力,廣泛適用于長(zhǎng)度小于20 kb的任何質(zhì)粒擴(kuò)增。Hieff Clone®快速克隆系統(tǒng)利用高效的同源重組反應(yīng)替代傳統(tǒng)的退火成環(huán)反應(yīng)。因此使用Hieff Mut™ Site-Directed Mutagenesis Kit進(jìn)行DNA定點(diǎn)突變時(shí),引物設(shè)計(jì)更加靈活,且擴(kuò)增反應(yīng)不再需要以線性方式進(jìn)行,極大減少了模板使用量,有利于原始甲基化模板的徹底降解。Hieff Clone®技術(shù)可以高效完成兩個(gè)PCR產(chǎn)物的無(wú)縫拼接,因此該試劑盒還能以單次擴(kuò)增的方式對(duì)目標(biāo)質(zhì)粒上不連續(xù)的兩個(gè)位點(diǎn)同時(shí)進(jìn)行突變。

      Hieff Mut™ Site-Directed Mutagenesis Kit中的重組酶Exnase經(jīng)過(guò)優(yōu)化,專(zhuān)門(mén)針對(duì)單堿基、不連續(xù)雙堿基定點(diǎn)突變。此外,如擴(kuò)增產(chǎn)物特異,其DpnI消化產(chǎn)物可不進(jìn)行DNA純化而直接用于重組反應(yīng)。高度優(yōu)化的反應(yīng)緩沖液、快捷的操作流程以及極高的成功率,使得Hieff Mut™ Site-Directed Mutagenesis Kit成為DNA定點(diǎn)突變?cè)噭┖小?/span>


      應(yīng)用范圍

      DNA定點(diǎn)突變

      注:如使用本品對(duì)質(zhì)粒進(jìn)行定點(diǎn)突變,請(qǐng)使用甲基化酶無(wú)缺陷的宿主菌 (例如Top10、DH5α、JM109)擴(kuò)增原始質(zhì)粒!


      產(chǎn)品組成

      編號(hào)

      組分

      產(chǎn)品編號(hào)/規(guī)格

      11003ES10 (10 T)

      11003-A

      2×Hieff® II PCR buffer 

      500 μl

      11003-B

      dNTP Mix (10 mM each)

      20 μl

      11003-C

      Hieff® II Pfu DNA Polymerase (1 U/μl)

      20 μl

      11003-D

      Dpn I (10 U/μl)

      20 μl

      11003-E

      2×Hieff Clone® Enzyme Premix

      100 μl


      運(yùn)輸與保存方法

      冰袋(wet ice)運(yùn)輸。產(chǎn)品-20℃保存。有效期1年。

       

      單堿基(或連續(xù)多堿基)定點(diǎn)突變實(shí)驗(yàn)方案

      實(shí)驗(yàn)流程概覽(圖一)

       

      圖一:使用Hieff Mut™ Site-Directed Mutagenesis Kit進(jìn)行單堿基(或連續(xù)多堿基)定點(diǎn)突變實(shí)驗(yàn)流程

      1. 引物設(shè)計(jì)

       

      向質(zhì)粒引入單堿基或連續(xù)多堿基定點(diǎn)突變,只需設(shè)計(jì)一對(duì)引物將質(zhì)粒進(jìn)行反向PCR擴(kuò)增即可。引物設(shè)計(jì)基本原則為:正反向擴(kuò)增引物5’端包含15-21 bp反向互補(bǔ)區(qū)域(GC含量40%-60%為佳),各引物非互補(bǔ)區(qū)域長(zhǎng)度至少為15 bp(待突變位點(diǎn)至引物3’端區(qū)域Tm值高于60℃為佳)。所需引入突變可以包含在互補(bǔ)區(qū)域內(nèi) (需要兩條引物上均引入點(diǎn)突變),也可以包含在任一條引物的非互補(bǔ)區(qū)域 (只需在一條引物上引入點(diǎn)突變),請(qǐng)勿將突變位點(diǎn)置于引物末端。以向pUC18引入單堿基突變?yōu)槔?,引物設(shè)計(jì)具體方案如圖二所示。

       

       

       

       

       圖二:向質(zhì)粒引入單堿基(或連續(xù)多堿基)定點(diǎn)突變引物設(shè)計(jì)示意圖

      注:計(jì)算引物Tm值時(shí),應(yīng)計(jì)算待突變位點(diǎn)至引物3’端這一區(qū)域內(nèi)的堿基,調(diào)整引物長(zhǎng)度使這一段Tm值高于60℃,待突變位點(diǎn)至引物5’端區(qū)域內(nèi)的堿基不應(yīng)參與計(jì)算。

      2. 目標(biāo)質(zhì)粒擴(kuò)增

      2.1 配制PCR反應(yīng)體系
      反應(yīng)各組分解凍后請(qǐng)充分搖勻,使用完畢后及時(shí)放回-20℃。2×Hieff® II PCR buffer請(qǐng)勿長(zhǎng)時(shí)間敞口放置。
      為了增加擴(kuò)增特異性,反應(yīng)體系配制過(guò)程請(qǐng)于冰水浴中進(jìn)行。為了防止Hieff® II Pfu DNA Polymerase的校對(duì)活性降解引物,請(qǐng)將聚合酶最后加入反應(yīng)體系中。

      組分

      加入量

      ddH2O

      Up to 50 μl

      2×Hieff® II PCR buffer 

      25 μl

      dNTP Mix (10 mM each) a

      1 μl

      模板DNA b

      Optional

      引物1 (10 μM)

      2 μl

      引物2 (10 μM)

      2 μl

      Hieff® II Pfu DNA Polymerase (1 U/μl) c

      1 μl

      a. 請(qǐng)勿使用dUTP和帶有尿嘧啶的引物或模板。

      b. 在質(zhì)粒能正常擴(kuò)增的前提下,應(yīng)盡量減少質(zhì)粒模板使用量,推薦使用≤1 ng新鮮提取的質(zhì)粒做模板。

      c. 推薦的酶的終濃度為1 U/50 μl反應(yīng)??蓪ieff® II Pfu DNA Polymerase在0.5-2 U/50 μl之間進(jìn)行優(yōu)化,但不要超過(guò)2 U/50 μl,尤其當(dāng)擴(kuò)增子長(zhǎng)度大于5 kb時(shí)。

      2.2 PCR擴(kuò)增反應(yīng)

      推薦PCR反應(yīng)條件:

      循環(huán)步驟

      溫度

      時(shí)間

      循環(huán)數(shù)

      預(yù)變性

      95℃

      30 sec

      1

      變性a

      退火b

      延伸c

      95℃

      60℃~72℃

      72℃

      15 sec

      15 sec

      30-60 sec/kb

      30 d

      徹底延伸

      72℃

      5 min

      1

      a. 對(duì)于大多數(shù)質(zhì)粒,變性溫度使用95℃即可。

      b. Hieff® II Pfu DNA Polymerase能夠促進(jìn)模板和引物高效退火。一般來(lái)說(shuō),退火溫度設(shè)置為引物Tm值即可。如果需要,可以建立一個(gè)溫度梯度反應(yīng)去尋找引物模板結(jié)合的最適溫度。退火時(shí)間太長(zhǎng)可能導(dǎo)致擴(kuò)增產(chǎn)物在膠上呈現(xiàn)彌散狀。

      c. 對(duì)于大多數(shù)擴(kuò)增反應(yīng),延伸過(guò)程可在72℃進(jìn)行。長(zhǎng)的延伸時(shí)間有助于提高擴(kuò)增產(chǎn)量。

      d. 為了防止擴(kuò)增過(guò)程中引入非目標(biāo)突變,強(qiáng)烈建議擴(kuò)增循環(huán)數(shù)≤35。如果擴(kuò)增效率良好的話(huà),推薦擴(kuò)增循環(huán)數(shù)≤30。

      反應(yīng)結(jié)束后取少量擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖電泳檢測(cè)。如目標(biāo)質(zhì)粒正確擴(kuò)增,則可進(jìn)行下步實(shí)驗(yàn)。

      3. 擴(kuò)增產(chǎn)物DpnI消化,去除甲基化模板質(zhì)粒
      因上述擴(kuò)增產(chǎn)物中包含原始模板質(zhì)粒,為防止其在轉(zhuǎn)化后形成假陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,必須在進(jìn)行重組環(huán)化之前進(jìn)行DpnI消化。

      推薦反應(yīng)體系如下:

      DpnI

      1 μl

      擴(kuò)增產(chǎn)物

      40~50 μl

      輕輕吹打混勻后,將上述反應(yīng)體系置于37℃恒溫反應(yīng)1~2小時(shí)。如產(chǎn)物擴(kuò)增特異,產(chǎn)物條帶單一,DpnI消化產(chǎn)物無(wú)需純化,可直接用于后續(xù)重組反應(yīng)。如擴(kuò)增不特異,DpnI消化結(jié)束后應(yīng)膠回收純化目標(biāo)擴(kuò)增產(chǎn)物。

      4. 重組反應(yīng)

      4.1 配制重組反應(yīng)體系

      正反向擴(kuò)增引物5’端包含完全反向互補(bǔ)的一段序列,因此在Exnase催化下擴(kuò)增產(chǎn)物5’末端和3’末端可以發(fā)生同源重組,完成擴(kuò)增產(chǎn)物環(huán)化過(guò)程。于冰水浴中,將下列組分依次加到無(wú)菌的1.5 ml Eppendorf管或PCR管的管底。如果不慎將液體粘在管壁,請(qǐng)務(wù)必通過(guò)短暫離心使其沉入管底。體系配制完成后,用移液器上下輕輕吹打幾次混勻各組分,避免產(chǎn)生氣泡 (請(qǐng)勿劇烈震蕩或者渦旋混勻)。

      組分

      加入量

      2×Hieff Clone® Enzyme Premix

      10 μl

      DpnI消化產(chǎn)物

      50~400 ng

      ddH2O

      Up to 20 μl

      單點(diǎn)突變重組反應(yīng)體系最適DNA使用量為0.03 pmol。該摩爾數(shù)對(duì)應(yīng)的DNA質(zhì)量可由以下公式粗略計(jì)算獲得:

      DpnI消化產(chǎn)物最適使用量 = [0.02 × 目標(biāo)質(zhì)粒堿基對(duì)數(shù)] ng (0.03 pmol)

      例如,向長(zhǎng)度為5 kb的目標(biāo)質(zhì)粒引入單點(diǎn)突變,DpnI消化產(chǎn)物最適使用量應(yīng)為:0.02 ×5000 = 100 ng。

      注:DNA量太多或者太少都將降低環(huán)化效率。請(qǐng)務(wù)必通過(guò)瓊脂糖電泳預(yù)先確認(rèn)DNA濃度,盡量嚴(yán)格按照推薦量配制反應(yīng)體系。當(dāng)DpnI消化產(chǎn)物最適使用量計(jì)算值不足50 ng或者超過(guò)400 ng時(shí),加入50ng或400 ng即可。DpnI消化產(chǎn)物不純化直接用于重組反應(yīng)時(shí),使用量不應(yīng)超過(guò)反應(yīng)總體積的1/5,即4μl。

      4.2 重組反應(yīng)

      1) 將上述體系置于50℃反應(yīng) 20 min。

      2) 待反應(yīng)完成后,立即將反應(yīng)管置于冰水浴中冷卻。

      3) 之后,反應(yīng)產(chǎn)物可直接進(jìn)行轉(zhuǎn)化;也可儲(chǔ)存于-20℃,待需要時(shí)解凍轉(zhuǎn)化。

      5. 反應(yīng)產(chǎn)物轉(zhuǎn)化、涂板、克隆鑒定

      1) 取10 μl冷卻反應(yīng)液,加入到100 μl感受態(tài)細(xì)胞中,輕彈管壁數(shù)下混勻,在冰上放置30 min。

      2) 42℃熱激45~90秒,冰水浴孵育2 min。

      3) 加入900 μl SOC或LB培養(yǎng)基,37℃孵育10min充分復(fù)蘇。

      4) 37℃,200rpm-250rpm,搖菌45 min。

      5) 取100 μl菌液均勻涂布在含有適當(dāng)抗生素的平板上。將平板倒置,于37℃過(guò)夜培養(yǎng)。

      注: 我們推薦您使用轉(zhuǎn)化效率>108 cfu/μg的感受態(tài)細(xì)胞。如果感受態(tài)轉(zhuǎn)化效率<108 cfu/μg (例如用CaCl2法新鮮制備的感受態(tài)轉(zhuǎn)化效率通常在106-107 cfu/μg之間),請(qǐng)將培養(yǎng)菌液在5,000 rpm離心3 min收集菌體,用100 μl LB培養(yǎng)基重懸后全部涂板。

       

      不連續(xù)雙堿基定點(diǎn)突變實(shí)驗(yàn)方案 (兩突變位點(diǎn)相距超過(guò)50 bp)

      實(shí)驗(yàn)流程概覽(圖三)

                      

                           
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        圖三:使用Hieff Mut™ Site-Directed Mutagenesis Kit進(jìn)行不連續(xù)雙堿基定點(diǎn)突變實(shí)驗(yàn)流程


      1. 引物設(shè)計(jì)

      向質(zhì)粒兩個(gè)不連續(xù)位點(diǎn)引入不連續(xù)雙堿基定點(diǎn)突變,需要設(shè)計(jì)兩對(duì)引物將質(zhì)粒分為兩段進(jìn)行擴(kuò)增。引物設(shè)計(jì)基本原則為:在每個(gè)待突變位點(diǎn)處設(shè)計(jì)部分反向互補(bǔ)的擴(kuò)增引物對(duì)。每對(duì)正反向引物5’端包含15-21 bp反向互補(bǔ)區(qū)域。所需引入突變可以包含在互補(bǔ)區(qū)域內(nèi)(需要兩條引物上均引入點(diǎn)突變),也可以包含在任一條引物的非互補(bǔ)區(qū)域(只需在一條引物上引入點(diǎn)突變),請(qǐng)勿將突變位點(diǎn)置于引物末端。以向pUC18引入雙堿基突變?yōu)槔?,引物設(shè)計(jì)具體方案如圖四所示。

       

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      圖四:向質(zhì)粒引入不連續(xù)雙堿基定點(diǎn)突變引物設(shè)計(jì)示意圖

      :計(jì)算引物Tm值時(shí),應(yīng)計(jì)算待突變位點(diǎn)至引物3’端這一區(qū)域內(nèi)的堿基,調(diào)整引物長(zhǎng)度使這一段Tm值高于60℃,待突變位點(diǎn)至引物5’端區(qū)域內(nèi)的堿基不應(yīng)參與計(jì)算。

      2. 目標(biāo)質(zhì)粒擴(kuò)增

      以待突變位點(diǎn)A、B為界,將質(zhì)粒分為AB段和BA段。使用Hieff™ II Pfu DNA Polymerase對(duì)AB段和BA段分別進(jìn)行擴(kuò)增。AB段擴(kuò)增引物對(duì)為:待突變位點(diǎn)A正向擴(kuò)增引物和待突變位點(diǎn)B反向擴(kuò)增引物;BA段擴(kuò)增引物對(duì)為:待突變位點(diǎn)B正向擴(kuò)增引物和待突變位點(diǎn)A反向擴(kuò)增引物。

      2.1 配制PCR反應(yīng)體系

      反應(yīng)各組分解凍后請(qǐng)充分搖勻,使用完畢后及時(shí)放回-20℃。2×Hieff® II PCR buffer請(qǐng)勿長(zhǎng)時(shí)間敞口放置。為了增加擴(kuò)增特異性,反應(yīng)體系配制過(guò)程請(qǐng)于冰水浴中進(jìn)行。為了防止Hieff® II Pfu DNA Polymerase的校對(duì)活性降解引物,請(qǐng)將聚合酶最后加入反應(yīng)體系中。
      推薦反應(yīng)體系如下:

      組分

      加入量

      ddH2O

      Up to 50 μl

      2×Hieff® II PCR buffer

      25 μl

      dNTP Mix (10 mM each) a

      1 μl

      模板DNA b

      Optional

      引物1 (10 μM)

      2 μl

      引物2 (10 μM)

      2 μl

      Hieff® II Pfu DNA Polymerase (1 U/μl) c

      1 μl

      a. 請(qǐng)勿使用dUTP和帶有尿嘧啶的引物或模板。

      b. 在各片段能正常擴(kuò)增的前提下,應(yīng)盡量減少質(zhì)粒模板使用量,推薦使用≤1 ng新鮮提取的質(zhì)粒做模板。

      c. 推薦的酶的終濃度為1 U/50 μl反應(yīng)??蓪ieff® II Pfu DNA Polymerase在0.5-2 U/50 μl之間進(jìn)行優(yōu)化,但不要超過(guò)2 U/50 μl,尤其當(dāng)擴(kuò)增子長(zhǎng)度大于5 kb時(shí)。

      2.2 PCR擴(kuò)增反應(yīng)

      推薦PCR反應(yīng)條件:

      循環(huán)步驟

      溫度

      時(shí)間

      循環(huán)數(shù)

      預(yù)變性

      95℃

      30 sec

      1

      變性a

      退火b

      延伸c

      95℃

      60℃~72℃

      72℃

      15 sec

      15 sec

      30-60 sec/kb

      30 d

      徹底延伸

      72℃

      5 min

      1

      a. 對(duì)于大多數(shù)質(zhì)粒,變性溫度使用95℃即可。對(duì)于超過(guò) 15 kb的擴(kuò)增子,變性溫度降低至92℃可以提高擴(kuò)增效率。

      b. Hieff® II Pfu DNA Polymerase能夠促進(jìn)模板和引物高效退火。一般來(lái)說(shuō),退火溫度設(shè)置為引物Tm值即可。如果需要,可以建立一個(gè)溫度梯度反應(yīng)去尋找引物模板結(jié)合的最適溫度。退火時(shí)間太長(zhǎng)可能導(dǎo)致擴(kuò)增產(chǎn)物在膠上呈現(xiàn)彌散狀。

      c. 對(duì)于大多數(shù)擴(kuò)增反應(yīng),延伸過(guò)程可在72℃進(jìn)行。長(zhǎng)的延伸時(shí)間有助于提高擴(kuò)增產(chǎn)量。

      d. 為了防止擴(kuò)增過(guò)程中引入非目標(biāo)突變,強(qiáng)烈建議擴(kuò)增循環(huán)數(shù)≤35。如果擴(kuò)增效率良好的話(huà),推薦擴(kuò)增循環(huán)數(shù)≤30。

      反應(yīng)結(jié)束后取少量擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖電泳檢測(cè)。如目標(biāo)質(zhì)粒正確擴(kuò)增,則可進(jìn)行下步實(shí)驗(yàn)。
      3. 擴(kuò)增產(chǎn)物DpnI消化,去除甲基化模板質(zhì)粒
      因上述擴(kuò)增產(chǎn)物中包含原始模板質(zhì)粒,為防止其在轉(zhuǎn)化后形成假陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,必須在進(jìn)行重組環(huán)化之前進(jìn)行DpnI消化。

      推薦反應(yīng)體系如下:

      DpnI

      1 μl

      擴(kuò)增產(chǎn)物

      40~50 μl

      將上述反應(yīng)體系置于37℃恒溫反應(yīng)1~2小時(shí)。如產(chǎn)物擴(kuò)增特異,產(chǎn)物條帶單一,DpnI消化產(chǎn)物無(wú)需純化,可直接用于后續(xù)重組反應(yīng)。如擴(kuò)增不特異,DpnI消化結(jié)束后應(yīng)膠回收純化目標(biāo)擴(kuò)增產(chǎn)物。


      4. 重組反應(yīng)

      4.1 配制重組反應(yīng)體系

      AB段和BA段擴(kuò)增產(chǎn)物末端分別包含完全一致的一段序列,因此在Exnase催化下兩擴(kuò)增產(chǎn)物末端可以分別發(fā)生同源重組,完成環(huán)化過(guò)程。于冰水浴中,將下列組分依次加到無(wú)菌的1.5 ml Eppendorf管或PCR管的管底。如果不慎將液體粘在管壁,請(qǐng)務(wù)必通過(guò)短暫離心使其沉入管底。體系配制完成后,用移液器上下輕輕吹打幾次混勻各組分,避免產(chǎn)生氣泡 (請(qǐng)勿劇烈震蕩或者渦旋混勻)。

      組分

      加入量

      ddH2O

      Up to 20 μl

      2×Hieff Clone® Enzyme Premix

      10 μl

      AB段DpnI消化產(chǎn)物

      20~200 ng

      BA段DpnI消化產(chǎn)物

      20~200 ng

      不連續(xù)雙點(diǎn)突變重組反應(yīng)體系最適DNA使用量為:較長(zhǎng)片段0.03 pmol,較短片段為0.06 pmol。這些摩爾數(shù)對(duì)應(yīng)的DNA質(zhì)量可由以下公式粗略計(jì)算獲得:

      較長(zhǎng)片段DpnI消化產(chǎn)物使用量 = [0.02 × 片段堿基對(duì)數(shù)] ng (0.03 pmol)

      較短片段DpnI消化產(chǎn)物使用量 = [0.04 × 片段堿基對(duì)數(shù)] ng (0.06 pmol)

      例如,AB段長(zhǎng)度為1 kb,BA段長(zhǎng)度為5 kb。則DpnI消化產(chǎn)物最適使用量為:AB段0.04 ×1000 = 40 ng;BA段0.02 × 5000 = 100 ng。
      注:DNA量太多或者太少都將降低環(huán)化效率。請(qǐng)務(wù)必通過(guò)瓊脂糖電泳預(yù)先確認(rèn)DNA濃度,盡量嚴(yán)格按照推薦量配制反應(yīng)體系。當(dāng)DpnI消化產(chǎn)物最適使用量計(jì)算值不足20 ng或者超過(guò)200 ng時(shí),加入20ng或200 ng即可。DpnI消化產(chǎn)物不純化直接用于重組反應(yīng)時(shí),使用量不應(yīng)超過(guò)反應(yīng)總體積的1/5,即4μl。


      4.2 重組反應(yīng)

      1)將上述體系置于50℃反應(yīng) 20 min。

      2) 待反應(yīng)完成后,立即將反應(yīng)管置于冰水浴中冷卻。

      3) 之后,反應(yīng)產(chǎn)物可直接進(jìn)行轉(zhuǎn)化;也可儲(chǔ)存于-20℃,待需要時(shí)解凍轉(zhuǎn)化。

      5. 反應(yīng)產(chǎn)物轉(zhuǎn)化、涂板、克隆鑒定

      1)  取10 μl冷卻反應(yīng)液,加入到100 μl感受態(tài)細(xì)胞中,輕彈管壁數(shù)下混勻,在冰上放置30 min。

      2)  42℃熱激45~90秒,冰水浴孵育2 min。

      3)  加入900 μl SOC或LB培養(yǎng)基,37℃孵育10min充分復(fù)蘇。

      4)  37℃,200rpm-250rpm,搖菌45 min。

      5)  取100 μl菌液均勻涂布在含有適當(dāng)抗生素的平板上。將平板倒置,于37℃過(guò)夜培養(yǎng)。

      注: 我們推薦您使用轉(zhuǎn)化效率>108 cfu/μg的感受態(tài)細(xì)胞。如果感受態(tài)轉(zhuǎn)化效率<108 cfu/μg (例如用CaCl2法新鮮制備的感受態(tài)轉(zhuǎn)化效率通常在106-107 cfu/μg之間),請(qǐng)將培養(yǎng)菌液在5,000 rpm離心3 min收集菌體,用100 μl LB培養(yǎng)基重懸后全部涂板。


      注意事項(xiàng)

      1)引物設(shè)計(jì)時(shí)5’端反向互補(bǔ)區(qū)盡量選擇無(wú)重復(fù)序列,且GC含量比較均勻的區(qū)域。當(dāng)這一區(qū)域內(nèi)GC含量在40%~60%范圍之內(nèi)時(shí),重組環(huán)化效率將達(dá)到最大。如這部分區(qū)域GC含量高于70%或者低于30%,重組環(huán)化效率會(huì)受到較大影響。

      2)當(dāng)兩突變位點(diǎn)相距小于50bp時(shí),應(yīng)將其視為一個(gè)突變位點(diǎn),將兩突變引入同一條/對(duì)引物進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

      3)DpnI只能識(shí)別甲基化DNA,請(qǐng)務(wù)必使用從甲基化酶無(wú)缺陷的宿主菌中擴(kuò)增的質(zhì)粒作為PCR模板。

      4)長(zhǎng)期放置、反復(fù)凍融會(huì)導(dǎo)致模板質(zhì)粒斷裂、開(kāi)環(huán)或降解,應(yīng)使用新鮮制備的質(zhì)粒作為模板。

      5)質(zhì)粒PCR擴(kuò)增結(jié)果需高度特異,雜帶較多會(huì)影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

      6)重組反應(yīng)體系中應(yīng)盡量避免金屬絡(luò)合劑(如EDTA)的帶入。因此,建議將DNA純化產(chǎn)物溶解在pH8.0的ddH2O中保存(常規(guī)膠回收試劑盒中的洗脫液可用pH8.0的ddH2O替代),請(qǐng)勿使用TE進(jìn)行DNA保存。

      7)冷卻后的重組反應(yīng)產(chǎn)物應(yīng)在1h內(nèi)進(jìn)行轉(zhuǎn)化,且轉(zhuǎn)化前保持在冰水浴中。如需儲(chǔ)存,于-20℃凍存。盡量避免室溫較長(zhǎng)時(shí)間放置或4℃長(zhǎng)期儲(chǔ)存。

      8)反應(yīng)產(chǎn)物的轉(zhuǎn)化體積不應(yīng)超過(guò)感受態(tài)細(xì)胞體積的1/10,否則會(huì)降低轉(zhuǎn)化效率。另外,當(dāng)轉(zhuǎn)化的DNA濃度太高時(shí),會(huì)抑制轉(zhuǎn)化反應(yīng)。將重組反應(yīng)產(chǎn)物稀釋5倍后取1/5進(jìn)行轉(zhuǎn)化。

      9)為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。

      10)本產(chǎn)品僅作科研用途!

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